论文目录 | |
| 中文摘要 | 第13-15
页 |
| Abstract | 第15-18
页 |
| 第一章 绪论 | 第18-70
页 |
| · 引言 | 第18-56
页 |
| · 生物活性肽的生物学意义及作用机理 | 第18-24
页 |
| · 生物活性肽的生理活性概述 | 第19-20
页 |
| · 生物活性肽的理化特性 | 第20
页 |
| · 生物活性肽形成过程对其理化性质的影响 | 第20-22
页 |
| · 肽的体内吸收机制 | 第22-24
页 |
| · 生物活性肽的制备方法概述 | 第24-26
页 |
| · 直接提取法分离天然生物活性肽 | 第24-25
页 |
| · 化学合成法制备目标生物活性肽 | 第25
页 |
| · 可控酶解蛋白质制备生物活性肽 | 第25-26
页 |
| · 酶解法制备生物活性肽的研究进展 | 第26-30
页 |
| · 国外的研究发展状况 | 第27-29
页 |
| · 国内蛋白质酶解方法制备生物活性肽的研究进展 | 第29-30
页 |
| · 肽类产品的纯化分离技术 | 第30-33
页 |
| · 膜分离技术(超滤、钠滤) | 第30-31
页 |
| · 离子交换分离技术 | 第31-32
页 |
| · 凝胶色谱技术 | 第32
页 |
| · 制备液相色谱 | 第32-33
页 |
| · 生物活性肽的产业化情况 | 第33-34
页 |
| · 蚕蛹蛋白质资源的开发利用研究进展 | 第34-39
页 |
| · 蚕蛹蛋白的营养指数 | 第35-36
页 |
| · 蚕蛹蛋白的研究和应用现状 | 第36-38
页 |
| · 蚕蛹蛋白的开发空白和研究前景 | 第38-39
页 |
| · 酶解蛋白质法制备血管紧张素转换酶抑制肽的研究进展 | 第39-48
页 |
| · 血管紧张素转换酶概述 | 第39-41
页 |
| · 血管紧张素转换酶(ACE)对血压的调节作用 | 第41-42
页 |
| · 血管紧张素转换酶(ACE)抑制活性肽的作用机制 | 第42-43
页 |
| · 血管紧张素转换酶抑制肽的研究和开发现状 | 第43-48
页 |
| · 生物活性肽构效关系理论及分析方法研究情况 | 第48-56
页 |
| · 化学结构定量描述符 | 第48-53
页 |
| · 统计方法的研究和发展现状 | 第53-55
页 |
| · 血管紧张素转换酶抑制肽构效关系的研究进展 | 第55-56
页 |
| · 本研究课题的立题背景、研究意义和主要研究内容 | 第56-58
页 |
| · 立题背景和研究意义 | 第56-57
页 |
| · 主要研究内容 | 第57-58
页 |
| · 主要参考文献 | 第58-70
页 |
| 第二章 血管紧张素转换酶抑制肽活性的RP-HPLC快速检测方法的建立 | 第70-83
页 |
| · 前言 | 第70-71
页 |
| · 实验材料和仪器 | 第71-74
页 |
| · 实验仪器 | 第71
页 |
| · 试剂与原料 | 第71-72
页 |
| · 实验方法 | 第72-74
页 |
| · 试剂制备 | 第72
页 |
| · 色谱检测条件 | 第72
页 |
| · 流动相条件 | 第72
页 |
| · HPLC法快速检测降高血压效果的原理和依据 | 第72-73
页 |
| · 分光光度法检测ACE抑制剂的活性 | 第73
页 |
| · 酶解蚕蛹蛋白肽的制备 | 第73
页 |
| · 统计分析 | 第73-74
页 |
| · 结果与讨论 | 第74-79
页 |
| · 检测波长的选择 | 第74
页 |
| · 底物HHL与产物HA的分离 | 第74-75
页 |
| · 本色谱条件的线性分析和最低检测限确定 | 第75
页 |
| · 回收率和精密度分析 | 第75-77
页 |
| · HHL和ACE之间的最佳剂量关系 | 第77-78
页 |
| · 利用蚕蛹蛋白水解物验证方法的应用性 | 第78-79
页 |
| · 结论 | 第79-80
页 |
| · 参考文献 | 第80-83
页 |
| 第三章 蚕蛹蛋白制备血管紧张素转换酶抑制肽的酶解条件优化 | 第83-101
页 |
| · 前言 | 第83-84
页 |
| · 材料与方法 | 第84-86
页 |
| · 实验仪器 | 第84
页 |
| · 试剂与原料 | 第84-85
页 |
| · 水解物样品的制备 | 第85
页 |
| · HPLC法检测ACE抑制活性 | 第85
页 |
| · 水解度的测定 | 第85
页 |
| · 统计分析 | 第85-86
页 |
| · 结果 | 第86-96
页 |
| · 蛋白酶的选择 | 第86-88
页 |
| · 水解条件的初步优化 | 第88-90
页 |
| · 酶解条件的进一步优化 | 第90-95
页 |
| · 具ACE抑制活性的小肽分子量估计 | 第95-96
页 |
| · 讨论 | 第96-97
页 |
| · 结论 | 第97-98
页 |
| · 参考文献 | 第98-101
页 |
| 第四章 蚕蛹蛋白组分的营养特性评价及清蛋白组分的酶解动力学研究 | 第101-118
页 |
| · 前言 | 第101
页 |
| · 材料与方法 | 第101-105
页 |
| · 实验仪器 | 第101-102
页 |
| · 实验试剂 | 第102
页 |
| · 蛋白组分的分级制备方法 | 第102-103
页 |
| · 各蛋白组分的氨基酸组成分析 | 第103
页 |
| · 蚕蛹蛋白质组分的营养指标评价 | 第103-104
页 |
| · 蚕蛹蛋白中清蛋白组分的提取条件优化 | 第104
页 |
| · 蚕蛹蛋白清蛋白组分的酶解样制备 | 第104
页 |
| · 清蛋白组分的水解度测定 | 第104-105
页 |
| · HPLC法检测ACE抑制活性 | 第105
页 |
| · 结果与讨论 | 第105-116
页 |
| · 蚕蛹蛋白组分的含量特点 | 第105-106
页 |
| · 蚕蛹蛋白质组分的氨基酸组成分析 | 第106-108
页 |
| · 蚕蛹蛋白组分的营养价值分析 | 第108-109
页 |
| · 蚕蛹清蛋白组分的提取条件优化 | 第109-112
页 |
| · 清蛋白酶解制备ACE抑制肽的酶解动力学 | 第112-116
页 |
| · 结论 | 第116-117
页 |
| · 参考文献 | 第117-118
页 |
| 第五章 蚕蛹蛋白组分水解特性与其水解产物的ACE抑制活性之间关系的研究 | 第118-132
页 |
| · 引言 | 第118
页 |
| · 材料与方法 | 第118-122
页 |
| · 实验仪器 | 第118-119
页 |
| · 实验试剂 | 第119-120
页 |
| · 蛋白组分的分级制备方法 | 第120
页 |
| · 蚕蛹蛋白清蛋白组分的酶解样制备 | 第120
页 |
| · 蛋白组分的水解度测定 | 第120-121
页 |
| · HPLC法检测ACE抑制活性 | 第121
页 |
| · SDS-PAGE蛋白质凝胶过滤 | 第121
页 |
| · 蚕蛹蛋白组分水解产物的凝胶过滤分析 | 第121
页 |
| · 统计分析方法 | 第121-122
页 |
| · 结果与讨论 | 第122-130
页 |
| · 蚕蛹蛋白组分的分子量分布特点 | 第122-124
页 |
| · 蚕蛹蛋白不同组分的ACE抑制效果 | 第124-125
页 |
| · 不同蛋白组分的水解特性分析 | 第125-130
页 |
| · 结论 | 第130-131
页 |
| · 参考文献 | 第131-132
页 |
| 第六章 血管紧张素转换酶抑制肽的分离纯化及其一级结构鉴定 | 第132-149
页 |
| · 引言 | 第132-133
页 |
| · 材料与方法 | 第133-137
页 |
| · 实验仪器 | 第133
页 |
| · 实验试剂 | 第133-134
页 |
| · 清蛋白水解产物的制备 | 第134
页 |
| · 超滤分离方法 | 第134
页 |
| · 凝胶柱层析分离方法 | 第134
页 |
| · 纳米级离子阱质谱测定活性肽一级结构的方法 | 第134-135
页 |
| · X!Tandem质谱比对软件和Xcalibur 2.0 SUR2质谱分析软件对离子阱质谱结果的分析方法 | 第135-136
页 |
| · 特定结构活性肽的合成方法 | 第136
页 |
| · 凝胶层析分离峰的体外抗消化实验方法 | 第136
页 |
| · ACE抑制活性的测定 | 第136-137
页 |
| · 结果与讨论 | 第137-146
页 |
| · 凝胶柱层析分离结果 | 第137-140
页 |
| · 纳米级离子阱质谱测定活性肽一级结构结果 | 第140-143
页 |
| · 凝胶柱分离峰的抗消化效果 | 第143-144
页 |
| · 特定活性肽的化学合成及活性验证结果 | 第144-146
页 |
| · 结论 | 第146-147
页 |
| · 参考文献 | 第147-149
页 |
| 第七章 基于药效团的血管紧张素转换酶抑制肽的结构优化与构效关系研究 | 第149-164
页 |
| · 引言 | 第149-150
页 |
| · 材料和方法 | 第150-154
页 |
| · 软件平台 | 第150
页 |
| · 药效团模型的产生 | 第150-151
页 |
| · 分子对接 | 第151-154
页 |
| · 结果 | 第154-159
页 |
| · 使用应用DS Catalyst生成药效团模型 | 第154-156
页 |
| · 基于药效团的ACE抑制肽的结构优化 | 第156-157
页 |
| · 肽thr-val-phe与ACE间的相互作用 | 第157-159
页 |
| · 讨论 | 第159-161
页 |
| · 结论 | 第161-162
页 |
| · 参考文献 | 第162-164
页 |
| 第八章 蚕蛹清蛋白酶解肽对SHR大鼠降血压效果的研究 | 第164-176
页 |
| · 引言 | 第164-165
页 |
| · 材料与方法 | 第165-166
页 |
| · 实验仪器 | 第165
页 |
| · 实验药品及试剂 | 第165
页 |
| · 实验动物 | 第165
页 |
| · 实验材料制备 | 第165-166
页 |
| · 实验方法 | 第166-167
页 |
| · SHR大鼠饲养条件 | 第166
页 |
| · SHR大鼠血压测定 | 第166
页 |
| · 实验用蚕蛹清蛋白ACE抑制活性肽的配制 | 第166
页 |
| · 蚕蛹清蛋白ACE抑制活性肽一次性给药实验 | 第166-167
页 |
| · 蚕蛹清蛋白ACE抑制活性肽长期给药实验 | 第167
页 |
| · 蚕蛹清蛋白ACE抑制活性肽急性毒性研究 | 第167-168
页 |
| · 半数致死量(LD_(50))的测定 | 第167-168
页 |
| · 预试验 | 第167
页 |
| · 正式试验 | 第167-168
页 |
| · 计算 | 第168
页 |
| · 最大给药量的测定 | 第168
页 |
| · 统计分析 | 第168-169
页 |
| · 结果与讨论 | 第169-174
页 |
| · 蚕蛹蛋白酶解肽一次给药对SHR大鼠血压的影响 | 第169-170
页 |
| · 蚕蛹清蛋白酶解肽长期给药对SHR大鼠血压的影响 | 第170-172
页 |
| · 清蛋白酶解肽长期服用对SHR大鼠体重的影响 | 第172
页 |
| · 半数致死量(LD_(50)) | 第172
页 |
| · 最大耐受量 | 第172-174
页 |
| · 一般情况 | 第172-173
页 |
| · 体重变化情况 | 第173
页 |
| · 主要脏器解剖肉眼观察 | 第173
页 |
| · 最大耐受量 | 第173-174
页 |
| · 结论 | 第174-175
页 |
| · 参考文献 | 第175-176
页 |
| 第九章 蚕蛹蛋白制备血管紧张素转换酶抑制肽物料平衡分析 | 第176-178
页 |
| · 蚕蛹蛋白制备血管紧张素转换酶抑制肽的流程 | 第176-177
页 |
| · 物料平衡分析结论 | 第177
页 |
| · 建议工艺方案 | 第177-178
页 |
| 第十章 结论及展望 | 第178-181
页 |
| · 结论 | 第178-180
页 |
| · 论文的主要创新点 | 第180
页 |
| · 论文的后续研究展望 | 第180-181
页 |
| 图示附图 | 第181-183
页 |
| 个人简介 | 第183
页 |
