柚子中果胶和生物类黄酮提取分离工艺及测定研究 |
论文目录 | | 第一章 绪论 | 第12-22
页 | · 柚子主要成分介绍 | 第12-15
页 | · 柚子中各活性成分研究 | 第15-20
页 | · 柚子中各活性成分的应用研究 | 第15-16
页 | · 果胶制备工艺研究 | 第16-19
页 | · 果胶提取工艺研究 | 第16-18
页 | · 果胶液脱色工艺研究 | 第18
页 | · 果胶液分离工艺研究 | 第18-19
页 | · 生物类黄酮的制备工艺研究 | 第19-20
页 | · 生物类黄酮的提取研究 | 第19-20
页 | · 生物类黄酮的分离纯化研究 | 第20
页 | · 本课题研究的目的,意义和主要研究内容 | 第20-22
页 | · 本课题研究的目的和意义 | 第20-21
页 | · 主要研究内容 | 第21-22
页 | 第二章 柚子中生物类黄酮和果胶的测定方法研究 | 第22-40
页 | · 柚子中柚皮甙和橙皮甙的反相高效液相色谱测定研究 | 第22-33
页 | · 基本原理 | 第22-23
页 | · 主要试剂与仪器 | 第23-24
页 | · 试验方法 | 第24
页 | · 标准溶液的配制 | 第24
页 | · 柚皮甙和橙皮甙的反相高效液相色谱测定 | 第24
页 | · 结果与讨论 | 第24-30
页 | · 固定相对分析的影响 | 第24
页 | · 流动相对分离效果的影响 | 第24-26
页 | · 流动相酸度对分析的影响 | 第26-27
页 | · 流动相流速对分析的影响 | 第27-29
页 | · 进样量对分析的影响 | 第29
页 | · 最佳色谱条件的选择 | 第29-30
页 | · 反相高效液相色谱法对柚皮甙和橙皮甙的定性和定量分析 | 第30-32
页 | · 仪器参数及工作条件的设置 | 第30
页 | · 定性分析 | 第30
页 | · 标准曲线 | 第30-31
页 | · 回收率试验 | 第31-32
页 | · 样品含量测定 | 第32
页 | · 小结 | 第32-33
页 | · 生物类黄酮的分光光度法测定研究 | 第33-35
页 | · 基本原理 | 第33
页 | · 主要试剂与仪器 | 第33-34
页 | · 试验方法 | 第34
页 | · 柚皮甙对照品溶液的制备 | 第34
页 | · 总黄酮的分光光度法测定 | 第34
页 | · 吸收光谱曲线和最大吸收波长的测定 | 第34-35
页 | · 标准曲线的建立 | 第35
页 | · 果胶的分光光度法测定研究 | 第35-39
页 | · 基本原理 | 第36
页 | · 主要试剂和仪器 | 第36-37
页 | · 试验方法 | 第37
页 | · 吸收光谱曲线和最大吸收波长的测定 | 第37
页 | · 标准曲线的制作 | 第37-38
页 | · 标准溶液的配制 | 第37-38
页 | · 标准曲线的建立 | 第38
页 | · 样品测定 | 第38-39
页 | · 本章小结 | 第39-40
页 | 第三章 柚皮中果胶浸取工艺研究 | 第40-48
页 | · 前言 | 第40
页 | · 基本原理 | 第40-42
页 | · 主要试剂和仪器 | 第42
页 | · 实验方法 | 第42-43
页 | · 样品处理 | 第42
页 | · 实验方法 | 第42-43
页 | · 结果与讨论 | 第43-47
页 | · 不同的无机酸对果胶提取的影响 | 第43
页 | · 提取液酸度对果胶提取的影响 | 第43
页 | · 提取过程中提取温度对果胶提取的影响 | 第43-44
页 | · 提取时间对果胶提取的影响 | 第44-45
页 | · 液固比对果胶提取的影响 | 第45
页 | · 最优提取条件选择 | 第45-47
页 | · 本章小结 | 第47-48
页 | 第四章 果胶液脱色和果胶分离工艺研究 | 第48-62
页 | · 前言 | 第48
页 | · 果胶液脱色工艺研究 | 第48-53
页 | · 树脂脱色基本原理 | 第48
页 | · 主要试剂和仪器 | 第48-49
页 | · 果胶脱色的实验方法 | 第49
页 | · 结果与讨论 | 第49-53
页 | · 色素的吸收光度曲线 | 第49-50
页 | · 树脂选择 | 第50
页 | · 果胶液的酸度对树脂AB-8脱色效果的影响 | 第50-51
页 | · 温度对脱色效果的影响 | 第51-52
页 | · AB-8树脂用量对树脂AB-8脱色效果的影响 | 第52-53
页 | · 振荡时间对脱色效果的影响 | 第53
页 | · 乙醇沉淀果胶工艺研究 | 第53-56
页 | · 基本原理 | 第53-54
页 | · 实验方法 | 第54
页 | · 沉淀工艺结果与讨论 | 第54-56
页 | · 果胶液浓度对果胶醇沉的影响 | 第54-55
页 | · 乙醇浓度对果胶沉淀的影响 | 第55
页 | · 沉析过程中酸度对沉淀的影响 | 第55-56
页 | · 沉淀时间对果胶沉淀率的影响 | 第56
页 | · 喷雾干燥法制备果胶工艺研究 | 第56-58
页 | · 基本原理 | 第56-57
页 | · 实验方法 | 第57
页 | · 果胶制备 | 第57-58
页 | · 乙醇沉淀-真空干燥制备果胶工艺与喷雾干燥工艺比较 | 第58-61
页 | · 工艺流程比较 | 第58
页 | · 产品生产成本比较 | 第58
页 | · 产品质量比较 | 第58-60
页 | · 灰分的测定 | 第58-59
页 | · 半乳糖醛酸(G.A)含量的测定 | 第59
页 | · 胶凝度测定 | 第59-60
页 | · 红外光谱分析 | 第60-61
页 | · 本章小结 | 第61-62
页 | 第五章 柚皮中生物类黄酮的浸取研究 | 第62-69
页 | · 前言 | 第62
页 | · 材料与方法 | 第62-63
页 | · 材料 | 第62-63
页 | · 试验方法 | 第63
页 | · 有机溶剂条件的优化 | 第63
页 | · 柚皮浸取液中生物类总黄酮的测定 | 第63
页 | · 结果与讨论 | 第63-68
页 | · 生物类黄酮提取溶剂的选择 | 第63
页 | · 乙醇浓度对黄酮提取效果的影响 | 第63-64
页 | · 提取时间对黄酮提取效果的影响 | 第64
页 | · 提取溶剂酸度对黄酮提取效果的影响试验 | 第64-65
页 | · 提取温度对黄酮提取效果的影响 | 第65
页 | · 液固比对黄酮提取效果的影响试验 | 第65-66
页 | · 乙醇提取黄酮的正交试验 | 第66-67
页 | · 黄酮提取次数条件试验 | 第67-68
页 | · 柚皮浸取液的脱脂 | 第68
页 | · 本章小结 | 第68-69
页 | 第六章 柚皮中生物类黄酮的分离纯化工艺研究 | 第69-84
页 | · 基本原理 | 第69-70
页 | · 材料与仪器 | 第70-71
页 | · 原料与试剂 | 第70-71
页 | · 仪器 | 第71
页 | · 试验方法 | 第71-73
页 | · 大孔吸附树脂的选择 | 第71-72
页 | · 大孔吸附树脂的静态吸附试验 | 第72
页 | · 树脂的静态洗脱试验 | 第72
页 | · 大孔吸附树脂的动态吸附试验 | 第72
页 | · 大孔吸附树脂的动态洗脱试验 | 第72-73
页 | · 结果与分析 | 第73-81
页 | · 大孔吸附树脂的选择 | 第73-74
页 | · 吸附等温线的测定 | 第74-75
页 | · X-5树脂对黄酮的静态吸附曲线 | 第75
页 | · 提取液性质对树脂吸附的影响 | 第75-77
页 | · 提取液浓度对树脂吸附的影响 | 第75-76
页 | · 提取液酸度对树脂吸附的影响 | 第76-77
页 | · 温度对树脂吸附的影响 | 第77
页 | · 静态吸附最佳解吸条件的确定 | 第77-79
页 | · 洗脱剂的选择和沈脱剂浓度对洗脱率的影响 | 第77-78
页 | · 酸度对黄酮的洗脱率的影响 | 第78-79
页 | · 树脂上吸附杂质的沈脱 | 第79
页 | · 树脂动态吸附和洗脱试验 | 第79-81
页 | · 吸附时最佳的溶液流速的确定 | 第79-80
页 | · 流速对洗脱率的影响 | 第80-81
页 | · 树脂使用次数对吸附的影响 | 第81
页 | · 生物类黄酮的制备和分析 | 第81-83
页 | · 生物类黄酮的制备 | 第81-82
页 | · 生物类黄酮分析 | 第82-83
页 | · 生物类黄酮总含量测定 | 第82
页 | · 柚皮甙含量测定 | 第82
页 | · 紫外光谱分析 | 第82
页 | · 化学显色反应 | 第82-83
页 | · 本章小结 | 第83-84
页 | 第七章 总结 | 第84-86
页 | 参考文献 | 第86-91
页 | 致谢 | 第91
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