论文目录 | |
| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-12页 |
| 英文缩写词表 | 第12-13页 |
| 第1章 文献综述 | 第13-23页 |
| 1.1 山茱萸属药用植物研究概述 | 第13-14页 |
| 1.1.1 山茱萸属植物研究概况 | 第13页 |
| 1.1.2 山茱萸研究概况 | 第13-14页 |
| 1.1.3 灯台树研究概况 | 第14页 |
| 1.2 山茱萸药用活性成分研究概述 | 第14-18页 |
| 1.2.1 药用活性成分萜类化合物的分类 | 第14-15页 |
| 1.2.2 药用活性成分环烯醚萜的药理作用 | 第15-16页 |
| 1.2.3 马钱苷合成途径的研究进展 | 第16-17页 |
| 1.2.4 马钱苷合成途径中的关键酶基因 | 第17-18页 |
| 1.3 药用植物转录组研究概述 | 第18-20页 |
| 1.3.1 转录组及其研究方法 | 第18-19页 |
| 1.3.2 高通量测序技术的应用 | 第19-20页 |
| 1.4 本研究的目的和意义 | 第20-23页 |
| 第2章 山茱萸和灯台树生长期果实特性的比较研究 | 第23-31页 |
| 2.1 前言 | 第23页 |
| 2.2 实验材料与仪器 | 第23页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第23页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第23页 |
| 2.3 实验方法 | 第23-24页 |
| 2.4 结果与分析 | 第24-29页 |
| 2.4.1 山茱萸和灯台树果实形态比较 | 第24-25页 |
| 2.4.2 山茱萸和灯台树果实大小统计分析 | 第25-27页 |
| 2.4.3 山茱萸和灯台树果实百粒重 | 第27页 |
| 2.4.4 山茱萸和灯台树果皮的含水率 | 第27-28页 |
| 2.4.5 山茱萸和灯台树果实的出皮率 | 第28-29页 |
| 2.5 讨论 | 第29-31页 |
| 第3章 山茱萸和灯台树中活性成分含量的测定 | 第31-45页 |
| 3.1 前言 | 第31页 |
| 3.2 实验材料 | 第31-32页 |
| 3.3 实验方法 | 第32-39页 |
| 3.3.1 总糖含量的测定 | 第32-34页 |
| 3.3.2 总有机酸含量的测定 | 第34页 |
| 3.3.3 总环烯醚萜苷含量的测定 | 第34-36页 |
| 3.3.4 马钱苷含量的测定 | 第36-39页 |
| 3.4 结果与分析 | 第39-44页 |
| 3.4.1 总糖含量 | 第39-40页 |
| 3.4.2 总有机酸含量 | 第40-41页 |
| 3.4.3 总环烯醚萜苷含量 | 第41-43页 |
| 3.4.4 马钱苷含量 | 第43-44页 |
| 3.5 讨论 | 第44-45页 |
| 第4章 山茱萸果实转录组测序和关键基因挖掘 | 第45-65页 |
| 4.1 前言 | 第45页 |
| 4.2 实验材料 | 第45-46页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第45页 |
| 4.2.2 实验设备 | 第45-46页 |
| 4.2.3 实验试剂 | 第46页 |
| 4.3 实验方法 | 第46-48页 |
| 4.3.1 山茱萸果实RNA提取 | 第46-47页 |
| 4.3.2 山茱萸果实总RNA质量鉴定 | 第47页 |
| 4.3.3 cDNA文库构建 | 第47页 |
| 4.3.4 Illumina测序和短读序组装 | 第47-48页 |
| 4.3.5 功能注释 | 第48页 |
| 4.3.6 SSR检测 | 第48页 |
| 4.4 结果与分析 | 第48-62页 |
| 4.4.1 山茱萸总RNA提取结果 | 第48-49页 |
| 4.4.2 山茱萸转录组序列拼接和质量评估 | 第49-52页 |
| 4.4.3 山茱萸转录组的功能注释与功能分类 | 第52-53页 |
| 4.4.4 山茱萸转录组的代谢途径分析 | 第53-58页 |
| 4.4.5 山茱萸转录组SSR分析 | 第58-59页 |
| 4.4.6 山茱萸活性成分代谢途径及相关基因的研究 | 第59-61页 |
| 4.4.7 山茱萸转录组数据中转录因子研究 | 第61-62页 |
| 4.5 讨论 | 第62-65页 |
| 4.5.1 山茱萸转录组测序与功能注释 | 第63页 |
| 4.5.2 山茱萸中代谢通路与相关基因的挖掘 | 第63页 |
| 4.5.3 山茱萸转录组中SSR分布 | 第63-65页 |
| 第5章 山茱萸和灯台树马钱苷合成途径关键酶基因克隆及表达分析 | 第65-81页 |
| 5.1 前言 | 第65页 |
| 5.2 实验材料 | 第65-66页 |
| 5.2.1 实验材料 | 第65页 |
| 5.2.2 实验设备 | 第65-66页 |
| 5.2.3 实验试剂 | 第66页 |
| 5.3 实验方法 | 第66-71页 |
| 5.3.1 引物设计 | 第66页 |
| 5.3.2 总RNA的提取 | 第66页 |
| 5.3.3 总RNA质量检测 | 第66-67页 |
| 5.3.4 cDNA第一链的合成 | 第67-68页 |
| 5.3.5 普通PCR扩增反应 | 第68页 |
| 5.3.6 PCR产物的胶回收和纯化 | 第68页 |
| 5.3.7 目的片段加A尾 | 第68-69页 |
| 5.3.8 T载体的连接 | 第69页 |
| 5.3.9 连接产物的转化 | 第69-70页 |
| 5.3.10 菌液PCR扩增 | 第70页 |
| 5.3.11 Real-time PCR | 第70-71页 |
| 5.4 结果与分析 | 第71-79页 |
| 5.4.1 总RNA的提取结果 | 第71-72页 |
| 5.4.2 基因克隆结果 | 第72-75页 |
| 5.4.3 Real-time PCR溶解曲线和扩增曲线 | 第75-77页 |
| 5.4.4 山茱萸和灯台树G10H和SLS基因的表达分析 | 第77-79页 |
| 5.5 讨论 | 第79-81页 |
| 5.5.1 山茱萸和灯台树G10H基因的表达量与马钱苷含量间的关系 | 第79-80页 |
| 5.5.2 山茱萸和灯台树SLS基因的表达量与马钱苷含量间的关系 | 第80-81页 |
| 结论 | 第81-83页 |
| 参考文献 | 第83-95页 |
| 致谢 | 第95-97页 |
| 攻读硕士学位期间研究成果 | 第97页 |
