论文目录 | |
摘要 | 第1-5
页 |
Abstract | 第5-17
页 |
1 绪论 | 第17-50
页 |
· 多糖的研究进展 | 第17-40
页 |
· 多糖的来源和种类 | 第18
页 |
· 多糖的分离提取技术 | 第18-19
页 |
· 多糖的精制技术 | 第19-20
页 |
· 多糖的分级纯化技术 | 第20-22
页 |
· 多糖的物化性质 | 第22-23
页 |
· 多糖的物理性质 | 第23
页 |
· 多糖的结构及分析 | 第23-26
页 |
· 多糖的生物学功能 | 第26-31
页 |
· 多糖的构效关系 | 第31-32
页 |
· 多糖的分子修饰 | 第32-38
页 |
· 多糖的国内外研究现状 | 第38-40
页 |
· 多糖研究的发展趋势 | 第40
页 |
· 荧光探针法表征DNA与其靶向分子的相互作用 | 第40-42
页 |
· 黑木耳多糖研究进展 | 第42-48
页 |
· 黑木耳多糖的提取、分离和纯化 | 第42-43
页 |
· 黑木耳多糖的结构分析 | 第43-44
页 |
· 黑木耳多糖的药理作用 | 第44-47
页 |
· 临床应用 | 第47
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· 黑木耳多糖的构效关系 | 第47-48
页 |
· 黑木耳多糖的分子修饰 | 第48
页 |
· 展望 | 第48
页 |
· 本论文研究的背景、目的、内容 | 第48-50
页 |
· 研究背景 | 第48-49
页 |
· 研究目的意义 | 第49
页 |
· 研究内容 | 第49
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· 主要技术路线 | 第49-50
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2 黑木耳多糖的提取与纯化 | 第50-55
页 |
· 试验仪器与药品 | 第50-51
页 |
· 试验仪器 | 第50
页 |
· 试验药品 | 第50-51
页 |
· 试验方法 | 第51-52
页 |
· 黑木耳多糖提取的工艺流程 | 第51
页 |
· 预处理 | 第51
页 |
· 黑木耳多糖的提取 | 第51
页 |
· 黑木耳多糖的鞣酸沉淀法脱蛋白 | 第51
页 |
· 黑木耳多糖的脱色 | 第51
页 |
· 多糖的测定 | 第51-52
页 |
· 蛋白质的测定: | 第52
页 |
· 黑木耳多糖的分级 | 第52
页 |
· 结果与讨论 | 第52-54
页 |
· 黑木耳多糖的提取 | 第52
页 |
· 黑木耳粗多糖的纯化 | 第52
页 |
· 黑木耳多糖的分级 | 第52-54
页 |
· AAP理化性质 | 第54
页 |
· 讨论 | 第54
页 |
· 本章小结 | 第54-55
页 |
3 黑木耳多糖硫酸酯化分子修饰 | 第55-62
页 |
· 试验仪器与药品 | 第55-56
页 |
· 试验仪器 | 第55
页 |
· 试验药品 | 第55-56
页 |
· 试验方法 | 第56-57
页 |
· 硫酸基(-OSO_4H)含量的测定—氯化钡-明胶比浊法 | 第56
页 |
· 黑木耳多糖硫酸酯化 | 第56-57
页 |
· 红外光谱分析 | 第57
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· 结果与讨论 | 第57-61
页 |
· 氯磺酸与吡啶体积比对黑木耳多糖硫酸酯取代度的影响 | 第57
页 |
· 多糖溶液与酯化试剂的体积比对黑木耳多糖硫酸酯取代度的影响 | 第57-58
页 |
· 酯化温度对黑木耳多糖硫酸酯取代度的影响 | 第58
页 |
· 酯化时间对黑木耳多糖硫酸酯取代度的影响 | 第58-59
页 |
· 正交试验结果 | 第59
页 |
· 黑木耳多糖硫酸酯的红外光谱分析 | 第59-60
页 |
· 黑木耳多糖硫酸酯的制备 | 第60
页 |
· 讨论 | 第60-61
页 |
· 本章小结 | 第61-62
页 |
4 黑木耳多糖与过渡金属离子鳌合物的制备 | 第62-71
页 |
· 材料与方法 | 第62-63
页 |
· 试剂 | 第62
页 |
· 仪器 | 第62-63
页 |
· 试验方法 | 第63-64
页 |
· 溶液中锌元素浓度的测定方法 | 第63
页 |
· 黑木耳多糖对不同锌盐的螯合能力研究 | 第63
页 |
· 黑木耳多糖与Zn(Ⅱ)螯合物的制备研究(静态法) | 第63-64
页 |
· 金属离子黑木耳多糖配合物的制备 | 第64
页 |
· 傅立叶红外光谱分析 | 第64
页 |
· 结果与讨论 | 第64-69
页 |
· 黑木耳多糖对不同锌盐的螯合能力 | 第64
页 |
· 黑木耳多糖与Zn(Ⅱ)螫合物的制备工艺 | 第64-67
页 |
· 鳌合物的红外光谱分析 | 第67-69
页 |
· 讨论 | 第69
页 |
· 本章小结 | 第69-71
页 |
5 黑木耳多糖的超声波改性研究 | 第71-75
页 |
· 材料与方法 | 第71-72
页 |
· 试剂 | 第71
页 |
· 仪器 | 第71-72
页 |
· 试验方法 | 第72
页 |
· 黑木耳多糖的超声波改性方法 | 第72
页 |
· 葡萄糖醛酸的测定方法 | 第72
页 |
· 黏度测定 | 第72
页 |
· 结论与讨论 | 第72-74
页 |
· 超声波改性黑木耳多糖的性质 | 第72
页 |
· 不同时间超声波辐射对黑木耳多糖糖醛酸含量的影响 | 第72-73
页 |
· 超声波改性对黑木耳多糖黏度的影响 | 第73
页 |
· 讨论 | 第73-74
页 |
· 本章小结 | 第74-75
页 |
6 硫酸酯化黑木耳多糖功能研究 | 第75-98
页 |
· 试验仪器与药品 | 第76-78
页 |
· 试验仪器 | 第76-77
页 |
· 试验材料 | 第77-78
页 |
· 试验方法 | 第78-82
页 |
· 硫酸酯化黑木耳多糖抑菌功能研究 | 第78-79
页 |
· 硫酸酯化黑木耳多糖清除自由基机理的研究 | 第79-80
页 |
· 硫酸酯化黑木耳多糖对小鼠免疫器官的影响 | 第80
页 |
· 硫酸酯化黑木耳多糖对人胃癌细胞823的作用 | 第80-81
页 |
· 硫酸酯化黑木耳多糖抗凝血作用研究 | 第81-82
页 |
· 结果与讨论 | 第82-96
页 |
· 硫酸酯化黑木耳多糖的抑菌功能 | 第82-84
页 |
· 硫酸酯化黑木耳多糖清除自由基机理的研究 | 第84-89
页 |
· 硫酸酯化黑木耳多糖对小鼠免疫器官的影响 | 第89-91
页 |
· 硫酸酯化黑木耳多糖对人胃癌细胞823的作用 | 第91-92
页 |
· 硫酸酯化黑木耳多糖抗凝血作用研究 | 第92-95
页 |
· 讨论 | 第95-96
页 |
· 本章小结 | 第96-98
页 |
7 超声波改性黑木耳多糖清除自由基机理的研究 | 第98-110
页 |
· 试验仪器与药品 | 第99
页 |
· 试验仪器 | 第99
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· 试验药品 | 第99
页 |
· 试验方法 | 第99-100
页 |
· 超声波改性黑木耳多糖清除自由基机理的研究 | 第99-100
页 |
· 超声波改性黑木耳多糖对小鼠免疫器官的影响 | 第100
页 |
· 结果与讨论 | 第100-108
页 |
· 超声波改性黑木耳多糖清除自由基机理的研究 | 第100-107
页 |
· 超声波改性黑木耳多糖对小鼠体重的影响 | 第107
页 |
· 超声波改性黑木耳多糖对小鼠免疫器官重量的影响 | 第107-108
页 |
· 讨论 | 第108
页 |
· 本章小结 | 第108-110
页 |
8 黑木耳多糖及其分子修饰多糖与DNA作用的光谱研究 | 第110-114
页 |
· 材料与方法 | 第110
页 |
· 试剂 | 第110
页 |
· 仪器 | 第110
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· 试验方法 | 第110-111
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· DNA和EB的配制 | 第110-111
页 |
· 黑木耳多糖及其分子修饰多糖对DNA紫外吸收光谱的影响 | 第111
页 |
· 黑木耳多糖及其分子修饰多糖对EB/DNA体系吸收光谱的影响 | 第111
页 |
· 结果与讨论 | 第111-113
页 |
· 黑木耳多糖及其分子修饰多糖对DNA紫外吸收光谱的影响 | 第111-112
页 |
· 黑木耳多糖及其分子修饰多糖对EB/DNA体系紫外吸收光谱的影响 | 第112-113
页 |
· 讨论 | 第113
页 |
· 本章小结 | 第113-114
页 |
9 黑木耳多糖成膜性能研究 | 第114-118
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· 材料与方法 | 第114
页 |
· 试剂 | 第114
页 |
· 仪器 | 第114
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· 试验方法 | 第114-115
页 |
· 膜的制备 | 第114
页 |
· 膜性能表征 | 第114-115
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· 结果与讨论 | 第115-117
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· 共混膜的力学性能 | 第115-116
页 |
· 水蒸气透过率(WVTR)的测定 | 第116
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· 讨论 | 第116-117
页 |
· 本章小结 | 第117-118
页 |
结论 | 第118-120
页 |
参考文献 | 第120-136
页 |
附录 | 第136-144
页 |
攻读学位期间发表的学术论文 | 第144-145
页 |
致谢 | 第145-146
页 |
独创性声明 | 第146
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学位论文版权使用授权书 | 第146页 |