论文目录 | |
| 摘要 | 第1-5
页 |
| ABSTRACT | 第5-12
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| 1 绪论 | 第12-34
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| · 体内药物分析的特点 | 第12-13
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| · 生物样品的前处理 | 第13-15
页 |
| · 液-液提取法（liquid-liquid extraction, LLE） | 第13
页 |
| · 液-固提取法（Liquid-Solid Extraction, LSE） | 第13-14
页 |
| · 固相微萃取（Solid phase micro-extraction, SPME） | 第14
页 |
| · 超临界流体萃取（Super critical fluid extraction, SFE） | 第14-15
页 |
| · 体内药物分析方法 | 第15-19
页 |
| · 光谱法 | 第15
页 |
| · 免疫分析法 | 第15-16
页 |
| · 色谱法 | 第16
页 |
| · 色谱联用技术 | 第16-19
页 |
| · 体内药物分析内容 | 第19-24
页 |
| · 药物滥用监测（Abusive Drug Monitoring） | 第19
页 |
| · 治疗药物监测（Therapeutic Drug Monitoring, TDM） | 第19-22
页 |
| · 药代动力学研究 | 第22
页 |
| · 手性药物的拆分与监测 | 第22-23
页 |
| · 体内内源性物质的测定 | 第23-24
页 |
| · 毛细管电泳及其在体内药物分析中的应用 | 第24-33
页 |
| · HPCE 的结构与类型 | 第24-26
页 |
| · HPCE 的优点 | 第26
页 |
| · HPCE 的样品预处理 | 第26-32
页 |
| · HPCE 体内药物分析应用 | 第32-33
页 |
| · 本论文研究目的和主要内容 | 第33-34
页 |
| 2 透析进样毛细管电泳系统与性能评价 | 第34-52
页 |
| · 引言 | 第34-37
页 |
| · 透析进样毛细管电泳意义 | 第34
页 |
| · 毛细管电泳预处理单元联用方式 | 第34-36
页 |
| · 本章的研究内容 | 第36-37
页 |
| · 实验部分 | 第37-39
页 |
| · 仪器与试剂 | 第37
页 |
| · 膜的制备 | 第37
页 |
| · 性能考察 | 第37-38
页 |
| · 咖啡牛奶中游离咖啡因的测定 | 第38
页 |
| · 平衡透析进样 | 第38
页 |
| · 电化学检测 | 第38-39
页 |
| · 结果与讨论 | 第39-49
页 |
| · 制膜材料 | 第39
页 |
| · 制膜工艺条件 | 第39-40
页 |
| · 膜的位置与结构 | 第40-41
页 |
| · 透析进样毛细管电泳系统性能评价 | 第41-44
页 |
| · 咖啡牛奶中游离咖啡因的测定 | 第44
页 |
| · 透析进样毛细管电泳系统性能拓展 | 第44-49
页 |
| · 小结 | 第49-52
页 |
| 3 透析进样毛细管电泳体内内源性物质分析——全血血糖浓度测定 | 第52-60
页 |
| · 引言 | 第52-53
页 |
| · 血糖浓度及其意义 | 第52
页 |
| · 血糖浓度测定方法 | 第52-53
页 |
| · 本章的研究内容 | 第53
页 |
| · 实验部分 | 第53-54
页 |
| · 仪器与试剂 | 第53
页 |
| · 循环伏安法 | 第53
页 |
| · 铜微电极制作 | 第53
页 |
| · 电泳及检测方法 | 第53-54
页 |
| · 测定步骤 | 第54
页 |
| · 结果与讨论 | 第54-57
页 |
| · 葡萄糖在铜电极上的电化学活性 | 第54
页 |
| · 检测电位的选择 | 第54-55
页 |
| · 电泳缓冲液与检测池溶液的选择 | 第55
页 |
| · 分析性能评价 | 第55-57
页 |
| · 全血中葡萄糖浓度的测定 | 第57
页 |
| · 光度法验证 | 第57
页 |
| · 小结 | 第57-60
页 |
| 4 透析进样毛细管电泳研究异丙嗪与牛血清白蛋白的相互作用 | 第60-70
页 |
| · 引言 | 第60-62
页 |
| · 相互作用分析 | 第60-61
页 |
| · 毛细管电泳相互作用分析 | 第61-62
页 |
| · 本章的研究内容 | 第62
页 |
| · 药物与蛋白相互作用研究的基本原理 | 第62-64
页 |
| · 实验部分 | 第64-65
页 |
| · 仪器与试剂 | 第64
页 |
| · 操作步骤 | 第64-65
页 |
| · 结果与讨论 | 第65-67
页 |
| · 工作曲线的绘制 | 第65-66
页 |
| · 结合常数的计算 | 第66
页 |
| · 结合机理 | 第66-67
页 |
| · 本法的优势 | 第67
页 |
| · 小结 | 第67-70
页 |
| 5 贝诺酯在兔血中代谢物的CE-CL 分析 | 第70-78
页 |
| · 引言 | 第70-71
页 |
| · 代谢物研究的意义 | 第70
页 |
| · CE-CL 联用 | 第70
页 |
| · 本章的研究内容 | 第70-71
页 |
| · 实验部分 | 第71-72
页 |
| · 仪器和试剂 | 第71
页 |
| · 实验动物 | 第71-72
页 |
| · 血液样品的采集和处理 | 第72
页 |
| · 结果与讨论 | 第72-76
页 |
| · CE-CL 装置 | 第72-73
页 |
| · 电泳条件的优化 | 第73
页 |
| · 对乙酰氨基酚标准曲线的绘制 | 第73-74
页 |
| · 回收率与重现性考察 | 第74
页 |
| · 家兔体内对乙酰氨基酚血药浓度的测定 | 第74-76
页 |
| · 本法的优势 | 第76
页 |
| · 小结 | 第76-78
页 |
| 6 麻黄碱在家兔体内的药物代谢动力学研究 | 第78-84
页 |
| · 引言 | 第78-79
页 |
| · 药代动力学研究的意义 | 第78
页 |
| · 本章的研究内容 | 第78-79
页 |
| · 材料与方法 | 第79
页 |
| · 仪器与试剂 | 第79
页 |
| · 实验动物 | 第79
页 |
| · 实验方法 | 第79
页 |
| · 结果与讨论 | 第79-82
页 |
| · 萃取条件的优化 | 第79-80
页 |
| · 色谱条件的优化 | 第80
页 |
| · 工作曲线的绘制 | 第80
页 |
| · 家兔体内麻黄碱的血药浓度的测定 | 第80-81
页 |
| · 药代动力学参数的求解 | 第81-82
页 |
| · 小结 | 第82-84
页 |
| 7 结论与展望 | 第84-86
页 |
| · 结论 | 第84-85
页 |
| · 展望与下一步工作计划 | 第85-86
页 |
| 致谢 | 第86-88
页 |
| 参考文献 | 第88-104
页 |
| 附录：作者在攻读博士学位期间发表论文目录 | 第104-105页 |
