论文目录 | |
| 中文摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 中文部分 | 第22-88页 |
| 第1章 引言 | 第22-32页 |
| 1.1 富血小板纤维蛋白促进软组织愈合的研究进展 | 第23-29页 |
| 1.1.1 概述 | 第23-25页 |
| 1.1.2 富血小板纤维蛋白的生物学特性 | 第25-27页 |
| 1.1.3 对软组织愈合的相关研究 | 第27-29页 |
| 1.2 牙龈成纤维细胞在口腔软组织愈合的重要性 | 第29-31页 |
| 1.3 本实验设计思路及创新点 | 第31-32页 |
| 第2章 细胞培养及体外炎症模型的建立 | 第32-41页 |
| 2.1 实验材料与设备 | 第32-33页 |
| 2.2 实验方法 | 第33-36页 |
| 2.2.1 人牙龈成纤维细胞系的建立 | 第33-34页 |
| 2.2.2 人牙龈成纤维细胞的纯化和传代培养 | 第34页 |
| 2.2.3 MTT法检测细胞增殖活力 | 第34页 |
| 2.2.4 Pg-LPS浓度测定 | 第34页 |
| 2.2.5 Real-Time q PCR测定Pg-LPS刺激HGFCs释放IL-1β,TNF-α,IL-6 情况 | 第34-35页 |
| 2.2.6 统计分析 | 第35-36页 |
| 2.3 实验结果 | 第36-39页 |
| 2.3.1 人牙龈成纤维细胞形态学观察 | 第36-37页 |
| 2.3.2 人牙龈成纤维细胞增殖活性 | 第37页 |
| 2.3.3 Pg-LPS浓度确定 | 第37-38页 |
| 2.3.4 Real-Time qPCR结果 | 第38-39页 |
| 2.4 讨论 | 第39-40页 |
| 2.4.1 HGFCs的原代培养 | 第39页 |
| 2.4.2 Pg-LPS对HGFCs的生物学特性影响 | 第39-40页 |
| 2.5 小结 | 第40-41页 |
| 第3章 富白细胞-血小板纤维蛋白对人牙龈成纤维细胞增殖及炎症因子释放的影响 | 第41-58页 |
| 3.1 实验材料与设备 | 第41-46页 |
| 3.1.1 富白细胞-血小板纤维蛋白制备方案(L-PRF) | 第42-43页 |
| 3.1.2 L-PRF扫描电镜 (SEM) | 第43页 |
| 3.1.3 L-PRF中生长因子释放物测定 | 第43-44页 |
| 3.1.4 L-PRF条件培养基的制备 | 第44-45页 |
| 3.1.5 L-PRF处理后细胞增殖的测定 | 第45页 |
| 3.1.6 L-PRF对衰老细胞增殖的影响 | 第45页 |
| 3.1.7 用Pg-LPS和L-PRF刺激成纤维细胞 | 第45-46页 |
| 3.1.8 统计分析 | 第46页 |
| 3.2 实验结果 | 第46-52页 |
| 3.2.1 扫描电镜结果 | 第46-49页 |
| 3.2.2 L-PRF中生长因子的释放规律 | 第49页 |
| 3.2.3 L-PRF对成纤维细胞增殖的影响 | 第49-50页 |
| 3.2.4 L-PRF诱导培养基对衰老细胞的影响 | 第50-51页 |
| 3.2.5 L-PRF和Pg-LPS对细胞刺激作用的比较 | 第51-52页 |
| 3.3 讨论 | 第52-56页 |
| 3.3.1 牙龈组织修复的过程 | 第52-53页 |
| 3.3.2 L-PRF的生物学特性 | 第53-55页 |
| 3.3.3 对HGFCs增殖和衰老细胞的影响 | 第55页 |
| 3.3.4 L-PRF对Pg-LPS刺激成纤维细胞炎性细胞因子分泌的影响 | 第55-56页 |
| 3.4 小结 | 第56-58页 |
| 第4章 富白细胞-血小板纤维蛋白对组织愈合的影响体内实验 | 第58-70页 |
| 4.1 实验材料与设备 | 第58-59页 |
| 4.1.1 主要实验设备 | 第58-59页 |
| 4.1.2 主要实验试剂及材料 | 第59页 |
| 4.1.3 实验动物 | 第59页 |
| 4.2 实验方法 | 第59-63页 |
| 4.2.1 兔血标本采集及L-PRF制备 | 第59-60页 |
| 4.2.2 口腔粘膜炎症诱导及L-PRF应用方案 | 第60-63页 |
| 4.2.3 统计分析 | 第63页 |
| 4.3 实验结果 | 第63-67页 |
| 4.3.1 大体组织观察及兔体重变化 | 第63-65页 |
| 4.3.2 各组HE染色分析结果比较 | 第65-67页 |
| 4.4 讨论 | 第67-69页 |
| 4.4.1 实验动物的选择 | 第67页 |
| 4.4.2 L-PRF对兔黏膜炎症模型愈合的影响 | 第67-69页 |
| 4.5 小结 | 第69-70页 |
| 第5章 富白细胞血小板纤维蛋白(L-PRF)对种植体周围软组织愈合及术后炎症控制的影响:随机临床研究 | 第70-88页 |
| 5.1 实验器材与材料 | 第71页 |
| 5.1.1 材料和试剂 | 第71页 |
| 5.1.2 设备与器械 | 第71页 |
| 5.2 一般信息 | 第71-72页 |
| 5.2.1 准入标准 | 第71-72页 |
| 5.2.2 排除标准 | 第72页 |
| 5.3 手术方法 | 第72-73页 |
| 5.3.1 白细胞-富血小板纤维蛋白的制备 | 第72-73页 |
| 5.3.2 手术过程 | 第73页 |
| 5.3.3 术后处理 | 第73页 |
| 5.4 术后评价 | 第73-75页 |
| 5.4.1 术后疼痛标准 | 第73页 |
| 5.4.2 术后粘膜愈合临床评价标准 | 第73-74页 |
| 5.4.3 各组部位愈合面积比较(Ⅰ, Ⅱ) | 第74页 |
| 5.4.4 Ⅰ组与Ⅱ组近、远中骨水平变化的比较 | 第74页 |
| 5.4.5 不同时间点Ⅰ组与Ⅱ组种植体近远中探查深度情况比较 | 第71-75页 |
| 5.4.6 患者满意度评估 | 第75页 |
| 5.5 统计学分析 | 第75-80页 |
| 5.6 实验结果 | 第80-85页 |
| 5.6.1 术后疼痛评估 | 第80页 |
| 5.6.2 术后粘膜愈合临床评价标准 | 第80-81页 |
| 5.6.3 术后7天创伤面积百分比 | 第81-82页 |
| 5.6.4 组Ⅰ和组Ⅱ间骨水平变化对比 | 第82-83页 |
| 5.6.5 探查袋深评分 | 第83页 |
| 5.6.6 视觉模拟量表与主观结果 | 第83-85页 |
| 5.7 讨论 | 第85-86页 |
| 5.8 小结 | 第86-88页 |
| 英文部分 | 第88-180页 |
| Chapter Ⅰ Introduction | 第88-105页 |
| Preface | 第88-90页 |
| 1.1 Research progress of platelet-rich fibrin in promoting soft tissue healing | 第90-101页 |
| 1.1.1 Overview | 第90-93页 |
| 1.1.2 Biological characteristics of platelet-rich fibrin | 第93-97页 |
| 1.1.3 Related research on soft tissue healing | 第97-101页 |
| 1.2 The importance of gingival fibroblasts in the healing of oral soft tissue | 第101-103页 |
| 1.3 The design ideas and innovations of this experiment | 第103-105页 |
| Chapter Ⅱ Cell Culture and Establishment of In Vitro Inflammation Model | 第105-119页 |
| 2.1 Experimental materials and equipment | 第105-106页 |
| 2.2 Experimental Methods | 第106-111页 |
| 2.2.1 Establishment of Human Gingival Fibroblast Cell Line | 第106-107页 |
| 2.2.2 Purification and subculture of human gingival fibroblasts | 第107-108页 |
| 2.2.3 MTT Assay for Cell Proliferation | 第108页 |
| 2.2.4 Determination of Pg-LPS Concentration | 第108-109页 |
| 2.2.5 Real-Time q PCR assay for the release of IL-1β, TNF-α, IL-6 by HGFCs challenged by Pg-LPS | 第109-110页 |
| 2.2.6 Statistical analysis | 第110-111页 |
| 2.3 Experimental results | 第111-115页 |
| 2.3.1 Morphological observation of human gingival fibroblasts | 第111-112页 |
| 2.3.2 Human gingival fibroblast proliferation activity | 第112-113页 |
| 2.3.3 Determination of Pg-LPS concentration | 第113-114页 |
| 2.3.4 Real-Time q PCR Results | 第114-115页 |
| 2.4 Discussion | 第115-118页 |
| 2.4.1 Primary culture of HGFCs | 第115-117页 |
| 2.4.2 Effects of PG-LPS on the biological characteristics of HGFCs | 第117-118页 |
| 2.5 Summary | 第118-119页 |
| Chapter Ⅲ Effect of Platelet-Rich Fibrin on Fibroblast Proliferation and Pro-Inflammatory Factor Release | 第119-142页 |
| 3.1 Experimental Materials and Equipment | 第119-120页 |
| 3.2 Experimental Methods | 第120-126页 |
| 3.2.1 Leukocyte-Platelet-Rich Fibrin Preparation Protocol (L-PRF) | 第120-121页 |
| 3.2.2 L-PRF Scanning Electron Microscope (SEM) | 第121-122页 |
| 3.2.3 Determination of Growth Factor Release in L-PRF | 第122-124页 |
| 3.2.4 Preparation of L-PRF Conditioned Medium | 第124页 |
| 3.2.5 Determination of cell proliferation after L-PRF treatment | 第124页 |
| 3.2.6 Effect Of L-PRF On the Proliferation of Aged Cells | 第124-125页 |
| 3.2.7 Stimulation of Fibroblasts with Pg-LPS and L-PRF | 第125页 |
| 3.2.8 Statistical analysis | 第125-126页 |
| 3.3 Experimental Results | 第126-134页 |
| 3.3.1 Scanning Electron Microscope Results | 第126-129页 |
| 3.3.2 Release law of growth factors in L-PRF | 第129页 |
| 3.3.3 Effect of L-PRF on Fibroblast Proliferation | 第129-131页 |
| 3.3.4 Effect of L-PRF-Induced Medium on Aged Cells | 第131-132页 |
| 3.3.5 Comparison of Cell Stimulatory Effects of L-PRF and Pg-LPS | 第132-134页 |
| 3.4 Discussion | 第134-140页 |
| 3.4.1 Gingival tissue repair process | 第134-135页 |
| 3.4.2 Biological characteristics of L-PRF | 第135-137页 |
| 3.4.3 Effects of L-PRF on Proliferation of Aged HGFCs Cells | 第137-139页 |
| 3.4.3 Effect Of L-PRF On the Secretion of Pro-inflammatory Cytokines in Fibroblasts Stimulated by Pg-LPS | 第139-140页 |
| 3.5 Summary | 第140-142页 |
| Chapter Ⅳ Effect of leukocyte-platelet fibrin on tissue healing in vivo | 第142-159页 |
| 4.1 Experimental Materials and Equipment | 第142-144页 |
| 4.1.1 Main Experimental Equipment | 第142-143页 |
| 4.1.2 Main Experimental Reagents and Materials | 第143页 |
| 4.1.3 Experimental Animals | 第143-144页 |
| 4.2 Experimental Methods | 第144-149页 |
| 4.2.1 Rabbit Blood Sample Collection and L-PRF Preparation | 第144-145页 |
| 4.2.2 Oral Mucosal Inflammation Induction and L-PRF Application Program | 第145-149页 |
| 4.2.3 Statistical Analysis | 第149页 |
| 4.3 Experimental Results | 第149-154页 |
| 4.3.1 General Tissue Observation and Rabbit Body Weight Changes | 第149-152页 |
| 4.3.2 Comparison of HE Staining Analysis Results of Each Group | 第152-154页 |
| 4.4 Discussion | 第154-158页 |
| 4.4.1 Selection of experimental animals | 第154-155页 |
| 4.4.2 Effect of L-PRF on healing of rabbit mucosal inflammation model | 第155-158页 |
| 4.5. Summary | 第158-159页 |
| Chapter Ⅴ Effect of Leukocyte-Platelet Rich Fibrin (L-PRF) On Peri-Implant Soft Tissue Healing and Postoperative Inflammation Control: A Randomized Clinical Study | 第159-180页 |
| 5.1 Experimental Equipment and Materials | 第161页 |
| 5.1.1 Materials and Reagents | 第161页 |
| 5.1.2 Equipment and Equipment | 第161页 |
| 5.2 General Information | 第161-163页 |
| 5.2.1 The inclusion criteria | 第162页 |
| 5.2.2 Exclusion criteria | 第162-163页 |
| 5.3 Surgical Methods | 第163-164页 |
| 5.3.1 Preparation of Leukocyte-Platelet-Rich Fibrin | 第163页 |
| 5.3.2 surgical procedure | 第163页 |
| 5.3.3 postoperative treatment | 第163-164页 |
| 5.4 Observation Measurements | 第164-167页 |
| 5.4.1 Postoperative pain criteria | 第164页 |
| 5.4.2 Clinical evaluation criteria for postoperative mucosal healing | 第164-165页 |
| 5.4.3 Comparison of healing area of each group (Ⅰ, Ⅱ) | 第165页 |
| 5.4.4 Comparison of Crestal Bone Level Changes Between Group Ⅰ And Group Ⅱ on Mesial and Distal Side | 第165-166页 |
| 5.4.5 Comparison of Bleeding on Probing Between Group Ⅰ And Group Ⅱ on Mesial and Distal Side of Dental Implants at Different Time Interval | 第166页 |
| 5.4.6 Patients’ perspective | 第166-167页 |
| 5.5 Statistical Analysis | 第167-172页 |
| 5.6 Experimental Results | 第172-176页 |
| 5.6.1 The Pain Score Summary for All Patients | 第172页 |
| 5.6.2 Clinical evaluation criteria for postoperative mucosal healing | 第172-173页 |
| 5.6.3 Ulcer Area Percentage After 14 Days | 第173-174页 |
| 5.6.4 Comparison of bone level changes between group Ⅰ and group Ⅱ | 第174页 |
| 5.6.5 deep probe score | 第174-175页 |
| 5.6.6 Visual analogue scale and subjective outcome | 第175-176页 |
| 5.7 Discussion | 第176-179页 |
| 5.8 Summary | 第179-180页 |
| 参考文献 | 第180-190页 |
| 作者简介及研究成果 | 第190-192页 |
| 致谢 | 第192页 |
