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化合物F-86促进微型猪单侧输尿管梗阻再通模型肾脏纤维化的恢复

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化合物F-86促进微型猪单侧输尿管梗阻再通模型肾脏纤维化的恢复
论文目录
 
中文摘要第1-8页
Abstract第8-16页
英文缩略词表第16-18页
第1章 引言第18-20页
第2章 综述第20-36页
  2.1 肾脏纤维化的流行病学及病理特点第20-23页
  2.2 上皮细胞的间充质转化第23-25页
  2.3 单侧输尿管梗阻模型第25-26页
  2.4 TGF-β1/Smads信号通路与肾纤维化第26-32页
    2.4.1 TGF-β1/Smads信号通路概述第26-28页
    2.4.2 TGF-β1 诱导肾脏纤维化第28-29页
    2.4.3 TGF-β1 与间充质转化第29-31页
    2.4.4 TGF-β1 与纤维母细胞的活化第31-32页
  2.5 吡啡尼酮与抗纤维化治疗的研究第32-36页
第3章 微型猪UUO再通模型肾脏纤维化可逆性修复的时间节点分析第36-66页
  3.1 实验设计第36-37页
    3.1.1 实验分组第36页
    3.1.2 肾功能的评价第36页
    3.1.3 肾脏组织病理损伤的评价第36页
    3.1.4 EMT的检测第36页
    3.1.5 肾脏组织纤维化指标第36-37页
    3.1.6 TGF-β1/Smads信号通路的活化情况第37页
  3.2 实验材料第37-41页
    3.2.1 实验动物第37页
    3.2.2 仪器设备第37-38页
    3.2.3 主要试剂及抗体第38-40页
    3.2.4 主要试剂的配制第40-41页
  3.3 实验方法第41-47页
    3.3.1 单侧输尿管梗阻再通模型的建立第41-42页
    3.3.2 血液及组织标本的收集第42页
    3.3.3 血清肌酐及尿素氮水平的检测第42-43页
    3.3.4 Masson三色法染色第43页
    3.3.5 PAS染色第43-44页
    3.3.6 免疫组化第44-45页
    3.3.7 肾脏组织蛋白提取第45页
    3.3.8 BCA法检测蛋白浓度第45-46页
    3.3.9 SDS-PAGE蛋白电泳第46页
    3.3.10 湿转膜第46-47页
    3.3.11 Western Blot第47页
    3.3.12 统计方法第47页
  3.4 实验结果第47-61页
    3.4.1 各组微型猪UUO及R-UUO肾功能的动态变化第47-49页
    3.4.2 微型猪R-UUO模型不同时间点各组肾组织的病理损伤分析第49-60页
    3.4.3 微型猪R-UUO模型再通28天肾组织蛋白Western blot检测第60-61页
  3.5 小结第61-62页
  3.6 讨论第62-66页
第4章 F-86 在微型猪R-UUO模型肾脏纤维化可逆性修复中的作用及机制研究第66-86页
  4.1 实验设计第66-67页
    4.1.1 实验分组第66-67页
    4.1.2 肾功能的评价第67页
    4.1.3 肾脏组织病理损伤的评价第67页
    4.1.4 EMT的检测第67页
    4.1.5 纤维化的检测第67页
    4.1.6 TGF-β1/Smads信号通路的活化情况第67页
  4.2 实验材料第67-68页
    4.2.1 实验动物第67-68页
    4.2.2 主要试剂及试剂配制第68页
    4.2.3 实验药物及抗体第68页
    4.2.4 仪器设备第68页
  4.3 实验方法第68-69页
    4.3.1 R-UUO模型的建立及样本的检测第68页
    4.3.2 统计方法第68-69页
  4.4 实验结果第69-82页
    4.4.1 F-86 对微型猪R-UUO模型肾功能的影响第69-70页
    4.4.2 F-86 促进微型猪R-UUO肾脏损伤的修复第70-71页
    4.4.3 F-86 减轻微型猪单侧输尿管梗阻再通所致上皮间充质转化第71-76页
    4.4.4 F-86 减轻微型猪单侧输尿管梗阻再通所致细胞外基质沉积第76-78页
    4.4.5 F-86 可能通过TGF-β1/Smads信号通路发挥抗纤维化作用第78-82页
  4.5 小结第82页
  4.6 讨论第82-86页
第5章 结论与课题创新性第86-88页
  5.1 结论第86页
  5.2 课题创新性第86-88页
参考文献第88-102页
作者简介及在学期间所取得的科研成果第102-104页
致谢第104页

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