论文目录 | |
| 缩略词表 | 第1-7页 |
| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 前言 | 第15-16页 |
| 第一章 综述 | 第16-28页 |
| 1 石菖蒲提取物生物活性研究进展 | 第16-19页 |
| 1.1 石菖蒲中提取的化合物种类 | 第16页 |
| 1.2 抗惊厥、镇静作用 | 第16-17页 |
| 1.3 抗抑郁作用 | 第17页 |
| 1.4 对抗帕金森症 | 第17页 |
| 1.5 缓解焦虑症 | 第17页 |
| 1.6 对抗阿尔兹海默 | 第17-18页 |
| 1.7 抗炎症作用 | 第18页 |
| 1.8 抗氧化 | 第18页 |
| 1.9 缓解高血压 | 第18页 |
| 1.10 抗骨质疏松 | 第18-19页 |
| 1.11 安胎作用 | 第19页 |
| 1.12 治疗关节炎 | 第19页 |
| 2 破骨细胞 | 第19-25页 |
| 2.1 破骨细胞分化 | 第19-20页 |
| 2.2 骨吸收 | 第20-21页 |
| 2.3 关键转录因子 | 第21-22页 |
| 2.4 共刺激信号通路 | 第22页 |
| 2.5 炎症 | 第22-25页 |
| 2.6 氧化应激 | 第25页 |
| 3 破骨细胞参与疾病 | 第25-28页 |
| 3.1 骨质疏松 | 第25-26页 |
| 3.2 类风湿性关节炎 | 第26页 |
| 3.3 牙周炎 | 第26页 |
| 3.4 癌症 | 第26-27页 |
| 3.5 银屑病关节炎 | 第27页 |
| 3.6 阿尔兹海默 | 第27页 |
| 3.7 畸形性骨炎(Paget’s disease) | 第27-28页 |
| 第二章 石菖蒲活性单体对破骨细胞分化的影响 | 第28-50页 |
| 1 材料与仪器 | 第28-30页 |
| 1.1 实验动物 | 第28页 |
| 1.2 石菖蒲根茎中提取的化合物 | 第28页 |
| 1.3 耗材 | 第28-29页 |
| 1.4 试剂 | 第29页 |
| 1.5 仪器与分析软件 | 第29-30页 |
| 2 方法 | 第30-32页 |
| 2.1 破骨细胞前体细胞的提取与培养 | 第30页 |
| 2.2 TRAP染色实验 | 第30-31页 |
| 2.3 MTT实验 | 第31页 |
| 2.4 骨吸收实验 | 第31-32页 |
| 2.5 丝状肌动蛋白环(F-actin ring)染色实验 | 第32页 |
| 2.6 统计学方法 | 第32页 |
| 3 结果 | 第32-48页 |
| 3.1 TN和 TT对破骨细胞生成的影响 | 第32-39页 |
| 3.2 TN和 TT对破骨细胞活性的影响 | 第39页 |
| 3.3 TN和 TT对骨吸收作用的影响 | 第39-44页 |
| 3.4 TN和 TT对 F-actin环形成的影响 | 第44-48页 |
| 4 讨论 | 第48-49页 |
| 5 小结 | 第49-50页 |
| 第三章 石菖蒲活性单体对抑制破骨细胞分化的作用机制研究 | 第50-77页 |
| 1 材料与方法 | 第50-52页 |
| 1.1 实验动物 | 第50页 |
| 1.2 耗材 | 第50页 |
| 1.3 试剂 | 第50-52页 |
| 1.4 仪器与分析软件 | 第52页 |
| 2 方法 | 第52-56页 |
| 2.1 破骨细胞前体细胞的提取与培养 | 第52-53页 |
| 2.2 RNA提取实验 | 第53页 |
| 2.3 反转录PCR实验 | 第53页 |
| 2.4 荧光定量PCR实验 | 第53-54页 |
| 2.5 蛋白提取实验 | 第54-55页 |
| 2.6 蛋白免疫印迹(Western blotting)实验 | 第55页 |
| 2.7 免疫荧光实验 | 第55-56页 |
| 2.8 钙震荡检测实验 | 第56页 |
| 2.9 统计学方法 | 第56页 |
| 3 结果 | 第56-74页 |
| 3.1 TN和 TT对破骨细胞相关标志性基因表达的影响 | 第56-61页 |
| 3.2 TN和 TT对破骨细胞分化关键转录因子表达的影响 | 第61-63页 |
| 3.3 TN和 TT对破骨细胞分化相关信号通路的影响 | 第63-74页 |
| 4 讨论 | 第74-76页 |
| 5 小结 | 第76-77页 |
| 第四章 石菖蒲活性单体对LPS诱导的小鼠骨丢失模型的影响 | 第77-86页 |
| 1 材料与方法 | 第77-78页 |
| 1.1 实验动物 | 第77页 |
| 1.2 耗材 | 第77页 |
| 1.3 试剂 | 第77-78页 |
| 1.4 仪器与分析软件 | 第78页 |
| 2 方法 | 第78-80页 |
| 2.1 LPS诱导的小鼠急性骨丢失模型及药物干预方法 | 第78页 |
| 2.2 骨组织制备 | 第78-79页 |
| 2.3 石蜡切片制备 | 第79页 |
| 2.4 H&E染色 | 第79页 |
| 2.5 TRAP染色 | 第79-80页 |
| 2.6 Micro-CT扫描 | 第80页 |
| 2.7 统计学方法 | 第80页 |
| 3 结果 | 第80-85页 |
| 3.1 TN和 TT对骨小梁的影响 | 第80-81页 |
| 3.2 TN和 TT对骨组织的影响 | 第81-83页 |
| 3.3 TN和 TT对体内破骨细胞生成的影响 | 第83-85页 |
| 4 讨论 | 第85页 |
| 5 小结 | 第85-86页 |
| 结论 | 第86-87页 |
| 参考文献 | 第87-98页 |
| 作者简介 | 第98-99页 |
| 致谢 | 第99页 |
