论文目录 | |
| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-9页 |
| 中英文缩写对照 | 第9-13页 |
| 1 绪论 | 第13-24页 |
| 1.1 牛乳酪蛋白的组成及性质 | 第13-14页 |
| 1.2 生物活性肽的研究进展 | 第14-20页 |
| 1.2.1 活性肽的概述及分类 | 第14-17页 |
| 1.2.2 乳源活性肽的研究进展 | 第17-18页 |
| 1.2.3 活性肽的的制备方法 | 第18-19页 |
| 1.2.4 活性肽的吸收机制概述 | 第19-20页 |
| 1.3 多肽肠道上皮吸收的研究进展 | 第20-22页 |
| 1.3.1 肠道上皮吸收屏障的概述 | 第20页 |
| 1.3.2 FITC荧光标记技术在肠道上皮吸收研究中的应用 | 第20页 |
| 1.3.3 基于Caco-2 单层细胞膜模型的活性肽的吸收机制研究 | 第20-22页 |
| 1.4 本课题主要研究内容及技术路线 | 第22-24页 |
| 1.4.1 主要内容 | 第22-23页 |
| 1.4.2 本研究技术路线 | 第23-24页 |
| 2 牛乳酪蛋白体外模拟消化液的生物活性研究 | 第24-39页 |
| 2.1 实验材料与方法 | 第24-26页 |
| 2.1.1 实验材料与试剂 | 第24-25页 |
| 2.1.2 主要仪器与设备 | 第25-26页 |
| 2.2 实验方法 | 第26-30页 |
| 2.2.1 蛋白酶活力的测定 | 第26-27页 |
| 2.2.2 体外模拟消化牛乳酪蛋白 | 第27-28页 |
| 2.2.3 酪蛋白水解度（DH）的测定 | 第28页 |
| 2.2.4 水解液DPPH自由基清除率的测定 | 第28页 |
| 2.2.5 水解液ACE抑制活性的测定 | 第28-29页 |
| 2.2.6 水解物的RP- HPLC检测 | 第29-30页 |
| 2.2.7 水解液的LC-MS/MS检测 | 第30页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第30-38页 |
| 2.3.1 酪蛋白水解度（DH）的变化 | 第30-31页 |
| 2.3.2 酪蛋白水解物的抗氧化活性分析 | 第31-32页 |
| 2.3.3 酪蛋白水解物的ACE抑制率分析 | 第32-33页 |
| 2.3.4 酪蛋白水解物RP-HPLC图谱分析 | 第33-35页 |
| 2.3.5 酪蛋白水解物的LC-MS/MS结果分析 | 第35-38页 |
| 2.4 本章小结 | 第38-39页 |
| 3 FITC-牛乳酪蛋白的体内吸收研究 | 第39-54页 |
| 3.1 实验材料与试剂 | 第39-41页 |
| 3.1.1 实验材料与试剂 | 第39-40页 |
| 3.1.2 主要仪器与设备 | 第40-41页 |
| 3.2 实验方法 | 第41-44页 |
| 3.2.1 荧光标记牛乳酪蛋白及荧光标记率的检测 | 第41页 |
| 3.2.2 SDS-PAGE分析FITC-酪蛋白水解液 | 第41-43页 |
| 3.2.3 FITC-酪蛋白大鼠体内消化实验 | 第43页 |
| 3.2.4 FITC-酪蛋白水解液在肠非翻转模型中的通透性检测 | 第43-44页 |
| 3.2.5 在体消化物的RP-HPLC检测 | 第44页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第44-53页 |
| 3.3.1 FITC-酪蛋白荧光标记率的结果 | 第44-45页 |
| 3.3.2 FITC-酪蛋白在人工胃液及人工肠液中的稳定性分析 | 第45-49页 |
| 3.3.3 FITC-酪蛋白在大鼠肠道吸收过程分析 | 第49-51页 |
| 3.3.4 不同肠段对FITC-酪蛋白水解液的通透性分析 | 第51-53页 |
| 3.3.5 大鼠消化物RP-HPLC图谱分析 | 第53页 |
| 3.4 本章小结 | 第53-54页 |
| 4 基于Caco-2 单层细胞模型的ACE抑制肽吸收机制研究 | 第54-76页 |
| 4.1 材料试剂与仪器 | 第54-57页 |
| 4.1.1 实验材料与试剂 | 第54-56页 |
| 4.1.2 主要仪器设备 | 第56-57页 |
| 4.2 实验方法 | 第57-60页 |
| 4.2.1 Caco-2 单层细胞模型的构建及验证 | 第57-59页 |
| 4.2.2 ACE抑制肽细胞毒性试验 | 第59页 |
| 4.2.3 培养条件对RYLGY跨膜转运的影响 | 第59-60页 |
| 4.2.4 ACE抑制肽的吸收机制研究 | 第60页 |
| 4.2.5 ACE抑制肽的RP-HPLC检测 | 第60页 |
| 4.2.6 三种混合长肽的LC-MS/MS检测 | 第60页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第60-74页 |
| 4.3.1 Caco-2 细胞模型验证结果 | 第60-64页 |
| 4.3.2 细胞毒性实验结果 | 第64页 |
| 4.3.3 培养条件对RYLGY跨膜转运量影响的实验结果 | 第64-66页 |
| 4.3.4 ACE抑制肽的吸收机制实验结果 | 第66-73页 |
| 4.3.5 三种混合长肽LC-MS/MS结果分析 | 第73-74页 |
| 4.4 本章小结 | 第74-76页 |
| 5 结论与展望 | 第76-77页 |
| 5.1 结论 | 第76页 |
| 5.2 展望 | 第76-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
| 参考文献 | 第78-88页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第88-90页 |
