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鼠尾藻多糖的提取分离、体外消化和酵解特征及其对肠道菌群的影响
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鼠尾藻多糖的提取分离、体外消化和酵解特征及其对肠道菌群的影响
论文目录
 
摘要第1-7页
ABSTRACT第7-14页
第一章 绪论第14-24页
　　1.1 引言第14页
　　1.2 鼠尾藻化学成分的研究现状第14-16页
　　　　1.2.1 多糖类第14-15页
　　　　1.2.2 多酚类第15页
　　　　1.2.3 异戊二烯类第15页
　　　　1.2.4 岩藻黄质第15-16页
　　　　1.2.5 多不饱和脂肪酸第16页
　　1.3 鼠尾藻多糖的生物活性研究第16-18页
　　　　1.3.1 抗氧化活性第16页
　　　　1.3.2 降血糖活性第16-17页
　　　　1.3.3 抗凝血活性第17页
　　　　1.3.4 抗肿瘤活性第17-18页
　　　　1.3.5 抑菌和抗病毒活性第18页
　　　　1.3.6 其他药理作用第18页
　　1.4 多糖的消化酵解对肠道功能的影响第18-22页
　　　　1.4.1 多糖对肠道功能的影响第18-20页
　　　　1.4.2 多糖的体外消化酵解研究第20-21页
　　　　1.4.3 肠道菌群对糖尿病的作用第21-22页
　　1.5 本课题的研究意义及主要内容第22-24页
　　　　1.5.1 研究背景及意义第22-23页
　　　　1.5.2 主要研究内容第23-24页
第二章 优化鼠尾藻粗多糖的微波提取及生物活性比较第24-49页
　　2.1 前言第24页
　　2.2 实验材料与试剂第24-25页
　　2.3 实验仪器与设备第25-26页
　　2.4 实验方法第26-32页
　　　　2.4.1 鼠尾藻原料的预处理第26页
　　　　2.4.2 响应面优化鼠尾藻多糖的微波提取方法第26-27页
　　　　2.4.3 鼠尾藻多糖的传统水提法第27页
　　　　2.4.4 鼠尾藻粗多糖理化性质测定第27-28页
　　　　2.4.5 多糖分子量测定第28-29页
　　　　2.4.6 单糖组成和糖醛酸含量分析第29-30页
　　　　2.4.7 红外光谱分析第30页
　　　　2.4.8 圆二色谱分析第30页
　　　　2.4.9 扫描电镜分析第30页
　　　　2.4.10 对 α-葡萄糖苷酶的抑制活性第30-31页
　　　　2.4.11 抗氧化活性测定第31页
　　　　2.4.12 数据分析第31-32页
　　2.5 实验结果与讨论第32-47页
　　　　2.5.1 鼠尾藻多糖微波提取条件的响应面优化第32-39页
　　　　2.5.2 鼠尾藻多糖的传统水提第39页
　　　　2.5.3 理化性质分析第39-41页
　　　　2.5.4 分子量的分布第41页
　　　　2.5.5 单糖组成分析第41-43页
　　　　2.5.6 红外分析第43-44页
　　　　2.5.7 圆二色谱分析第44-45页
　　　　2.5.8 扫描电镜分析第45页
　　　　2.5.9 对 α-葡萄糖苷酶的抑制作用分析第45-46页
　　　　2.5.10 抗氧化活性分析第46-47页
　　2.6 本章小结第47-49页
第三章 鼠尾藻多糖的分离纯化、结构鉴定及抗氧化和降血糖活性第49-64页
　　3.1 前言第49页
　　3.2 实验材料与试剂第49页
　　3.3 实验仪器与设备第49-50页
　　3.4 实验方法第50-52页
　　　　3.4.1 鼠尾藻粗多糖的制备第50页
　　　　3.4.2 鼠尾藻多糖的分离纯化第50页
　　　　3.4.3 理化性质分析第50-51页
　　　　3.4.4 分子量测定第51页
　　　　3.4.5 单糖和糖醛酸组成与含量测定第51页
　　　　3.4.6 红外光谱测定第51页
　　　　3.4.7 三股螺旋结构测定第51页
　　　　3.4.8 原子力显微镜测定第51页
　　　　3.4.9 高碘酸氧化第51-52页
　　　　3.4.10 α-葡萄糖苷酶的抑制活性第52页
　　　　3.4.11 抗氧化活性分析第52页
　　　　3.4.12 数据分析第52页
　　3.5 实验结果与讨论第52-62页
　　　　3.5.1 鼠尾藻多糖的分离纯化第52-53页
　　　　3.5.2 理化性质第53-54页
　　　　3.5.3 分子量第54-55页
　　　　3.5.4 单糖和糖醛酸组成与含量第55-56页
　　　　3.5.5 红外光谱第56-58页
　　　　3.5.6 三股螺旋结构第58页
　　　　3.5.7 原子力显微镜测定第58-59页
　　　　3.5.8 高碘酸氧化第59-60页
　　　　3.5.9 对 α-葡萄糖苷酶的抑制活性分析第60-61页
　　　　3.5.10 抗氧化活性分析第61-62页
　　3.6 本章小结第62-64页
第四章 鼠尾藻多糖在人体模拟胃肠道系统的消化特征第64-73页
　　4.1 前言第64页
　　4.2 实验材料与试剂第64-65页
　　4.3 实验仪器与设备第65页
　　4.4 实验方法第65-67页
　　　　4.4.1 鼠尾藻多糖的制备第65页
　　　　4.4.2 体外消化液的配置第65页
　　　　4.4.3 鼠尾藻多糖在模拟人体胃肠道中的消化第65-66页
　　　　4.4.4 多糖消化产物分子量的测定第66页
　　　　4.4.5 消化产物还原糖浓度的测定第66页
　　　　4.4.6 消化产物中游离单糖测定第66-67页
　　　　4.4.7 数据分析第67页
　　4.5 实验结果与讨论第67-72页
　　　　4.5.1 消化产物分子量的变化第67-69页
　　　　4.5.2 消化液中还原糖含量的变化第69-71页
　　　　4.5.3 消化液中的游离单糖的测定第71-72页
　　4.6 本章小结第72-73页
第五章 鼠尾藻多糖酵解代谢特征第73-87页
　　5.1 前言第73页
　　5.2 实验材料与试剂第73-74页
　　5.3 实验仪器与设备第74页
　　5.4 实验方法第74-77页
　　　　5.4.1 鼠尾藻多糖的制备第74-75页
　　　　5.4.2 配置发酵培养基第75页
　　　　5.4.3 制备人体肠道菌群第75页
　　　　5.4.4 体外发酵鼠尾藻多糖第75-76页
　　　　5.4.5 测定酵解产物的pH值第76页
　　　　5.4.6 检测总糖和还原糖含量第76页
　　　　5.4.7 测定酵解产物中单糖含量第76页
　　　　5.4.8 测定酵解产物中SCFA含量第76-77页
　　　　5.4.9 DNA提取和焦磷酸测序第77页
　　　　5.4.10 数据分析第77页
　　5.5 实验结果与讨论第77-86页
　　　　5.5.1 酵解产物中pH的变化第77-78页
　　　　5.5.2 酵解液中总糖和还原糖浓度的变化第78-79页
　　　　5.5.3 酵解产物的单糖组成及含量第79页
　　　　5.5.4 酵解产物中SCFA的含量第79-83页
　　　　5.5.5 ST-P2发酵对人体肠道菌群的影响第83-86页
　　5.6 本章小结第86-87页
结论与展望第87-90页
1、结论第87-89页
2、创新点第89页
3、展望第89-90页
参考文献第90-100页
攻读硕士学位期间取得的研究成果第100-102页
致谢第102-103页
附件第103页

本篇论文共103页，点击这进入下载页面。
 
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