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5-羟基-雌马酚产生菌的分离、耐氧驯化及耐氧机制研究

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5-羟基-雌马酚产生菌的分离、耐氧驯化及耐氧机制研究
论文目录
 
摘要第1-6页
ABSTRACT第6-11页
第一章 前言第11-15页
  1.1 大豆异黄酮主要成分及生理活性第11-12页
    1.1.1 大豆异黄酮结构及组成第11页
    1.1.2 大豆异黄酮的生理功能第11-12页
  1.2 大豆异黄酮转化菌的研究第12-13页
    1.2.1 大豆异黄酮的吸收代谢第12页
    1.2.2 5-羟基-雌马酚产生菌的分离筛选第12-13页
    1.2.3 大豆异黄酮代谢产物的生物学活性第13页
  1.3 微生物耐氧驯化第13-14页
  1.4 研究意义及创新点第14-15页
    1.4.1 研究意义第14页
    1.4.2 创新点第14-15页
第二章 5-羟基-雌马酚产生菌的分离筛选与鉴定第15-23页
  2.1 试验材料第15-16页
    2.1.1 供试菌群来源第15页
    2.1.2 菌株分离培养基第15页
    2.1.3 药品与试剂第15页
    2.1.4 主要试验仪器与设备第15-16页
  2.2 试验方法第16-17页
    2.2.1 菌株分离第16页
    2.2.2 菌株转化活性的检测第16页
    2.2.3 染料木素转化产物的分离纯化与鉴定第16页
    2.2.4 染料木素转化产物的手征性测定第16-17页
    2.2.5 菌株对底物染料木素最大转化能力测定第17页
    2.2.6 转化菌株耐氧性能的测定第17页
    2.2.7 转化菌株的纯化与菌种保藏第17页
    2.2.8 转化菌株的菌种鉴定第17页
  2.3 实验结果第17-21页
    2.3.1 染料木素转化菌株的分离与鉴定第17-18页
    2.3.2 染料木素转化产物的分离纯化第18-19页
    2.3.3 染料木素转化产物的结构鉴定第19-20页
    2.3.4 产物 5-羟基-雌马酚的手征性测定第20页
    2.3.5 菌株AUH-JLC257 对底物染料木素最大转化能力测定第20-21页
  2.4 讨论第21-22页
  2.5 结论第22-23页
第三章 5-羟基-雌马酚产生菌的耐氧驯化及生物学特性第23-30页
  3.1 试验材料第23-24页
    3.1.1 菌株第23页
    3.1.2 耐氧驯化培养基第23页
    3.1.3 药品与试剂第23页
    3.1.4 主要仪器设备第23-24页
  3.2 实验方法第24-25页
    3.2.1 耐氧驯化第24页
    3.2.2 耐氧突变株Aeroto-AUH-JLC2H-257 菌体形态观察第24页
    3.2.3 生理生化特性第24页
    3.2.4 菌株生长特性第24页
    3.2.5 耐氧突变株Aeroto-AUH-JLC2H-257 的耐氧特性第24-25页
  3.3 结果与分析第25-29页
    3.3.1 菌株AUH-JLC257 耐氧驯化前后菌体形态特性比较第25页
    3.3.2 菌株AUH-JLC257 耐氧驯化前后生长特性比较第25-26页
    3.3.3 耐氧驯化前后菌体生理生化特征比较第26-27页
    3.3.4 耐氧突变株Aeroto-AUH-JLC2H-257 耐氧能力分析第27-29页
  3.4 结论第29-30页
第四章 耐氧突变株Aeroto-AUH-JLC2H-257 有氧转化与调控研究第30-41页
  4.1 试验材料第30-31页
    4.1.1 药品与试剂第30页
    4.1.2 主要仪器与设备第30-31页
  4.2 试验方法第31-32页
    4.2.1 耐氧突变株转化产物分离纯化与结构鉴定第31页
    4.2.2 耐氧突变株Aeroto-AUH-JLC2H-257 有氧转化动态第31页
    4.2.3 耐氧突变株Aeroto-AUH-JLC2H-257 有氧转化能力的测定第31页
    4.2.4 通过添加还原剂对耐氧突变株Aeroto-AUH-JLC2H-257 有氧转化进行调控 . 21第31-32页
    4.2.5 添加还原剂后耐氧突变株Aeroto-AUH-JLC2H-257 对底物最大转化能力测定22第32页
  4.3 结果与分析第32-40页
    4.3.1 耐氧突变株Aeroto-AUH-JLC2H-257 对不同底物的有氧转化第32-34页
    4.3.2 耐氧突变株Aeroto-AUH-JLC2H-257 对不同底物的有氧转化动态第34-36页
    4.3.3 耐氧突变株Aeroto-AUH-JLC2H-257 在有氧下对底物最大转化能力测定第36-38页
    4.3.4 添加还原剂对耐氧突变株Aeroto-AUH-JLC2H-257 有氧转化调控第38-39页
    4.3.5 耐氧突变株Aeroto-AUH-JLC2H-257 对底物最大转化能力测定第39-40页
  4.4 结论第40-41页
第五章 耐氧突变株Aeroto-AUH-JLC2H-257 的耐氧机制第41-49页
  5.1 实验材料第41-42页
    5.1.1 药品与试剂第41页
    5.1.2 主要仪器设备第41-42页
  5.2 实验方法第42-43页
    5.2.1 耐氧突变株抗氧化“保护膜”结构观察第42页
    5.2.2 NO含量的检测第42页
    5.2.3 NADH氧化酶及NADH过氧化氢酶活性的检测第42-43页
  5.3 结果与分析第43-47页
    5.3.1 耐氧突变株抗氧化“保护膜”的主动“防氧”机制第43-44页
    5.3.2 耐氧突变株的主动“耗氧”机制第44-46页
    5.3.3 耐氧突变株的主动“驱氧”机制第46页
    5.3.4 耐氧突变株的主动“避氧”机制第46-47页
  5.4 讨论第47-49页
结论第49-50页
参考文献第50-55页
作者简历第55-56页
致谢第56-57页

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