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鞘脂与PPAR相互作用及其对癌细胞凋亡调控的影响

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鞘脂与PPAR相互作用及其对癌细胞凋亡调控的影响
论文目录
 
中文摘要第1-6 页
ABSTRACT第6-11 页
插图和附表清单第11-14 页
第一章 文献综述及立题分析第14-37 页
  · 细胞凋亡第15-21 页
    · 细胞凋亡的基本概念第15-17 页
    · 细胞凋亡的调控第17-18 页
    · 细胞凋亡与肿瘤第18-21 页
  · 鞘脂第21-23 页
  · 过氧化物酶体增殖物激活受体第23-28 页
    · PPARs的分布和结构第24 页
    · PPARs的转录调控第24-28 页
  · 鞘脂与细胞凋亡第28-32 页
    · 神经酰胺与细胞凋亡第28-31 页
    · 鞘氨醇与细胞凋亡第31-32 页
    · 鞘氨醇-1-磷酸与细胞凋亡第32 页
  · 过氧化物酶体增殖物激活受体与细胞凋亡调控第32-36 页
    · PPARα与细胞凋亡第32-33 页
    · PPARγ与细胞凋亡第33-34 页
    · PPARβ与细胞凋亡第34 页
    · PPARs与癌症相关性第34-36 页
  · 立题分析和实验内容设计第36-37 页
第二章 鞘脂与细胞凋亡调控第37-65 页
  · 材料与试剂第37-40 页
    · 细胞第37 页
    · 主要试剂第37-39 页
    · 主要仪器第39 页
    · 分析软件第39-40 页
  · 实验方法第40-45 页
    · 细胞培养及处理第40 页
    · 形态学检测第40 页
    · 细胞存活率的测定-MTT法(噻唑蓝比色法)第40-41 页
    · 流式细胞仪检测细胞周期第41 页
    · 流式细胞仪检测细胞凋亡第41 页
    · DNA梯检测第41-42 页
    · Western blot-ECL检测方法第42-43 页
    · 流式细胞仪测量胞内免疫荧光第43-44 页
    · 细胞免疫荧光化学第44 页
    · 统计学分析第44-45 页
  · 结果及分析第45-61 页
    · 不同剂量11种不同鞘脂类物质对细胞存活率(MTT)的影响第45-47 页
    · 细胞形态学的变化第47-51 页
    · Annexin V-PI定量检测细胞凋亡第51-52 页
    · 流式细胞仪检测细胞周期第52-53 页
    · 神经酰胺处理短期细胞的p38MAPK的含量的变化第53-54 页
    · 神经酰胺短期处理细胞的ERK信号途径的影响第54-55 页
    · 抑制p38 MAPK对神经酰胺短期、长期处理引致细胞凋亡的影响第55-56 页
    · p38 MAPK的抑制剂对神经酰胺长期处理细胞引致的DNA片段化的影响第56 页
    · 神经酰胺长期处理导致细胞出现典型的细胞凋亡第56-58 页
    · Western blot检测神经酰胺对NFκB表达量变化的影响第58-59 页
    · 免疫细胞化学测定神经酰胺对NFκB的转位及表达的影响第59-61 页
    · 神经酰胺对细胞周期素依赖蛋白激酶CDK7表达的影响第61 页
  · 小结第61-62 页
  · 讨论第62-65 页
第三章 过氧化物酶体增殖物激活受体与细胞凋亡调控第65-90 页
  · 材料与试剂第65-66 页
    · 细胞第65 页
    · 主要试剂第65 页
    · 主要仪器第65-66 页
  · 实验方法第66-71 页
    · PPARα、γ基因表达的RT-PCR检测方法第66-68 页
    · PCR产物回收第68 页
    · 大肠杆菌转化第68 页
    · 小量提取质粒DNA第68 页
    · 大量提取质粒DNA第68-69 页
    · 序列测定第69 页
    · 脂质体转染第69 页
    · 萤光素酶的测定第69-70 页
    · 细胞乳酸脱氢酶(LDH)释放率的测定第70 页
    · 统计学分析第70-71 页
  · 结果第71-87 页
    · PPARα和PPARγ的RT-PCR检测方法的建立第71-74 页
    · 细胞中PPARγ表达的检测第74-75 页
    · PPARγ不同配体对细胞活性的影响第75-77 页
    · PPARγ不同配体对细胞周期的影响第77-79 页
    · PPARγ不同配体对细胞凋亡的影响第79-81 页
    · PPARγ不同配体对PPAR转录活性的影响第81-84 页
    · PPARγ激活促进细胞凋亡的机制研究第84-87 页
  · 小结第87-88 页
  · 讨论第88-90 页
第四章 鞘脂与PPAR相互作用及其在细胞凋亡调控中的作用第90-110 页
  · 材料与试剂第90-91 页
    · 细胞第90 页
    · 主要试剂第90 页
    · 主要仪器第90-91 页
  · 实验方法第91-92 页
    · 细胞免疫荧光化学第91 页
    · 其他方法第91 页
    · 统计学分析第91-92 页
  · 结果第92-106 页
    · 神经酰胺与PPARγ配体有相似的促进细胞凋亡、抑制细胞生长作用第92-94 页
    · 神经酰胺对细胞中PPARγ分布的影响第94-95 页
    · 神经酰胺对PPARγ mRNA表达量的影响第95-97 页
    · 神经酰胺对PPARγ蛋白表达量的影响第97 页
    · 曲格列酮对PPARγ量表达量(mRNA水平和蛋白水平)的影响第97-98 页
    · 神经酰胺和曲格列酮对PPARγ转录活性的影响第98-99 页
    · 流式细胞术检测神经酰胺对PPARγ的调节作用第99-100 页
    · 神经酰胺促进细胞凋亡至少部分经由PPARγ激活的途径第100-102 页
    · 神经酰胺ERK信号通路的影响第102-104 页
    · 神经酰胺和PPARγ对CDK7信号通路的影响第104-106 页
  · 小结第106-107 页
  · 讨论第107-110 页
全文总结及工作展望第110-113 页
参考文献第113-121 页
附录第121-126 页
致谢第126页

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