论文目录 | |
| 中文文摘 | 第1-7
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| 英文摘要 | 第7-14
页 |
| 英文缩略词表 | 第14-15
页 |
| 第一章 TCS对MDA-MB-231和MCF—7乳腺癌细胞的影响 | 第15-31
页 |
| 前言 | 第15
页 |
| 1 材料与方法 | 第15-19
页 |
| · 实验细胞与细胞培养条件 | 第15
页 |
| · 实验材料 | 第15-17
页 |
| · 主要实验仪器 | 第15-16
页 |
| · 细胞培养主要实验材料和试剂 | 第16
页 |
| · 主要溶液的配制 | 第16-17
页 |
| · 实验方法 | 第17-19
页 |
| · 细胞台盼蓝拒染试验计数活细胞、绘制细胞生长曲线 | 第17
页 |
| · TCS处理前后细胞形态学观察 | 第17-18
页 |
| · MTT实验 | 第18-19
页 |
| · 流式细胞术测乳腺癌细胞周期和凋亡 | 第19
页 |
| 2 实验结果 | 第19-26
页 |
| · 细胞生长曲线 | 第19-20
页 |
| · TCS处理前后两种乳腺癌细胞的形态学变化 | 第20-21
页 |
| · MTT结果 | 第21-24
页 |
| · TCS对MDA-MB-231细胞的生长抑制作用 | 第21-22
页 |
| · TCS对MCF-7细胞的生长抑制作用 | 第22-23
页 |
| · TCS作用下不同乳腺癌细胞系之间生长抑制率的比较 | 第23-24
页 |
| · MDA-MB-231细胞的药物浓度作用曲线 | 第24
页 |
| · 流式细胞仪分析结果 | 第24-26
页 |
| · MDA-MB-231和MCF-7细胞经TCS处理前后的细胞周期 | 第24-26
页 |
| · MDA-MB-231和MCF-7细胞经TCS处理前后细胞凋亡值 | 第26
页 |
| 3 讨论 | 第26-30
页 |
| · 天花粉蛋白的抗肿瘤作用 | 第26-27
页 |
| · TCS对MDA-MB-231和MCF-7乳腺癌细胞增殖的影响 | 第27-28
页 |
| · TCS对MDA-MB-231和MCF-7乳腺癌细胞的敏感性差异 | 第28-29
页 |
| · TCS对MDA-MB-231和MCF-7乳腺癌细胞周期和凋亡的影响 | 第29-30
页 |
| 4 小结 | 第30-31
页 |
| 第二章 TCS对MDA-MB-231乳腺癌细胞ERα基因表达及甲基化的影响 | 第31-57
页 |
| 前言 | 第31
页 |
| 1 材料与方法 | 第31-47
页 |
| · 实验细胞与细胞培养条件 | 第31
页 |
| · 实验材料 | 第31-36
页 |
| · 细胞培养主要实验仪器和试剂 | 第31-32
页 |
| · RT-PCR仪器和试剂 | 第32-33
页 |
| · MSP试剂 | 第33
页 |
| · Western-blot材料和试剂 | 第33-34
页 |
| · 主要溶液的配制 | 第34-36
页 |
| · 实验方法 | 第36-47
页 |
| · RT-PCR检测细胞ERαmRNA的表达 | 第36-40
页 |
| · MSP检测TCS、5-Aza-C处理前后细胞ERα甲基化状态 | 第40-43
页 |
| · Western blot法 | 第43-47
页 |
| · TCS对MDA-MB-231乳腺癌细胞内分泌治疗敏感性的影响 | 第47
页 |
| 2 实验结果 | 第47-51
页 |
| · RT-PCR结果 | 第47-48
页 |
| · MSP结果 | 第48-49
页 |
| · Western blot结果 | 第49-50
页 |
| · TCS对MDA-MB-231乳腺癌细胞内分泌治疗敏感性的影响 | 第50-51
页 |
| 3 讨论 | 第51-56
页 |
| · ERα阴性乳腺癌基因表达沉默的研究 | 第51-53
页 |
| · ERα基因5'端核心启动子区CpG岛甲基化检测 | 第53-54
页 |
| · 天花粉蛋白的去甲基化效应 | 第54
页 |
| · TCS处理MDA-MB-231乳腺癌细胞株后恢复对他莫昔芬的敏感性 | 第54-56
页 |
| 4 小结 | 第56-57
页 |
| 第三章 TCS对ERα阴性乳腺癌裸鼠移植瘤生长及ERα表达的影响 | 第57-72
页 |
| 前言 | 第57
页 |
| 1 材料与方法 | 第57-62
页 |
| · 材料和试剂 | 第57-58
页 |
| · 主要仪器和材料 | 第57
页 |
| · 主要溶液的配制 | 第57-58
页 |
| · 裸鼠饲养 | 第58
页 |
| · 细胞培养 | 第58
页 |
| · 人乳腺癌裸鼠皮下移植瘤模型的建立 | 第58-59
页 |
| · 各组不同处理和检测方法 | 第59-62
页 |
| · 给药步骤 | 第59
页 |
| · 乳腺癌裸鼠移植瘤体积、重量的测量和血液常规生化的检测 | 第59
页 |
| · 苏木精伊红(HE)染色光镜观察 | 第59-60
页 |
| · RT-PCR检测裸鼠皮下移植瘤ERαmRNA的表达 | 第60-61
页 |
| · MSP检测裸鼠皮下移植瘤ERα的甲基化状态 | 第61-62
页 |
| · Western blot印迹法检测裸鼠皮下移植瘤ERα蛋白表达 | 第62
页 |
| 2 结果 | 第62-67
页 |
| · 人乳腺癌裸鼠皮下移植瘤模型的成功建立 | 第62-64
页 |
| · TCS对裸鼠移植瘤的影响 | 第64-65
页 |
| · TCS对荷瘤裸鼠肝肾功能及血液系统的影响 | 第65-66
页 |
| · TCS对裸鼠移植瘤细胞形态学(HE染色)的改变 | 第66
页 |
| · TCS对裸鼠移植瘤ERα基因mRNA的表达 | 第66-67
页 |
| · 裸鼠皮下移植瘤ERα的甲基化状态 | 第67
页 |
| · TCS对裸鼠移植瘤ERα蛋白表达的影响 | 第67
页 |
| 3 讨论 | 第67-71
页 |
| · TCS对乳腺癌裸鼠移植瘤的抑瘤作用 | 第67-69
页 |
| · TCS对乳腺癌裸鼠移植瘤ERα的去甲基化效应 | 第69-70
页 |
| · TCS的不良反应 | 第70-71
页 |
| 4 小结 | 第71-72
页 |
| 问题与展望 | 第72-73
页 |
| 结论 | 第73-74
页 |
| 参考文献 | 第74-84
页 |
| 综述一 | 第84-107
页 |
| 综述二 | 第107-123
页 |
| 致谢 | 第123-124
页 |
| 攻读学位期间主要的研究成果 | 第124
页 |
