论文目录 | |
| 内容提要 | 第1-11
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| 第1章 绪论 | 第11-37
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| 1 研究背景与现状 | 第11-29
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| · 半胱氨酸蛋白酶 | 第11-26
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| · 半胱氨酸蛋白酶与细胞的自噬和凋亡 | 第11-24
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| · 半胱氨酸蛋白酶与癌症 | 第24-25
页 |
| · 半胱氨酸蛋白酶抑制剂 | 第25-26
页 |
| · 基质金属蛋白酶 | 第26-29
页 |
| · 基质金属蛋白酶简介 | 第26-27
页 |
| · 基质金属蛋白酶抑制剂 | 第27-28
页 |
| · 中药与基质金属蛋白酶 | 第28-29
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| 2 研究思路与设计 | 第29-31
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| 参考文献 | 第31-37
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| 第2章 组织蛋白酶抑制剂的筛选及其对细胞自噬和凋亡的调控作用研究 | 第37-63
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| · 材料与方法 | 第37-38
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| · 所用试剂和实验材料 | 第37
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| · 所用仪器 | 第37-38
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| · 实验方法 | 第38-43
页 |
| · 组织蛋白酶抑制剂的体外筛选 | 第38
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| · Caspase的体外活性抑制检测 | 第38-39
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| · 细胞培养 | 第39
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| · 免疫印迹 | 第39-40
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| · 免疫细胞化学 | 第40
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| · 细胞凋亡的检测 | 第40-41
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| · 溶酶体膜通透性(LMP)检测 | 第41
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| · 单丹(磺)酰戊二胺(MDC)染色 | 第41
页 |
| · 溶酶体红色荧光探针(lysotracker red)标记 | 第41-42
页 |
| · 细胞核染色 | 第42-43
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| · 实验结果 | 第43-58
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| · 组织蛋白酶抑制剂的体外筛选 | 第43
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| · STS能够在体外有效的抑制caspase-3和caspase-8的活性 | 第43-44
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| · STS抑制血清饥饿诱导HT1080细胞发生的自噬和凋亡 | 第44-50
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| · STS抑制血清去除诱导的HT1080细胞溶酶体膜的通透性增加 | 第50-52
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| · STS不能抑制caspase依赖的细胞凋亡 | 第52-53
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| · E-64不能抑制血清去除诱导的细胞凋亡 | 第53-55
页 |
| · E-64d抑制血清去除诱导的自噬并促进凋亡 | 第55-57
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| · PARP的降解与半胱氨酸蛋白酶的相关性 | 第57-58
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| · 结论 | 第58-61
页 |
| 参考文献 | 第61-63
页 |
| 第3章 丹参酮ⅡA磺酸钠抗肿瘤活性研究 | 第63-72
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| · 材料与方法 | 第63
页 |
| · 所用试剂和实验材料 | 第63
页 |
| · 所用仪器 | 第63
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| · 实验方法 | 第63-65
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| · 时间依赖性抑制的活性测定 | 第63
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| · 细胞培养 | 第63-64
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| · 细胞活力检测(MTT) | 第64
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| · 细胞迁移实验(划痕法) | 第64
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| · 细胞侵袭实验 | 第64-65
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| · 实验结果 | 第65-69
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| · STS对cathepsin L的抑制是时间依赖的慢结合效应 | 第65
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| · STS对HT1080细胞的活力影响 | 第65-66
页 |
| · STS抑制细胞迁移和侵袭活性 | 第66-69
页 |
| · 结论 | 第69-71
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| 参考文献 | 第71-72
页 |
| 第4章 基质金属蛋白酶抑制剂的筛选和抗肿瘤活性研究 | 第72-81
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| · 材料与方法 | 第72
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| · 所用试剂和实验材料 | 第72
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| · 所用仪器 | 第72
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| · 实验方法 | 第72-74
页 |
| · MMPs抑制剂的体外筛选 | 第72-73
页 |
| · 细胞培养 | 第73
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| · 细胞活力检测(MTT) | 第73
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| · 细胞迁移实验 | 第73
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| · 细胞三维培养 | 第73-74
页 |
| · 实验结果 | 第74-78
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| · 焦山栀对MMPs的抑制及对细胞行为的影响 | 第74-75
页 |
| · 夜交藤对MMPs的抑制及对细胞行为的影响 | 第75-76
页 |
| · 桂枝对MMPs的抑制及对细胞行为的影响 | 第76-78
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| · 结论 | 第78-79
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| 参考文献 | 第79-81
页 |
| 攻读学位期间发表的论文 | 第81-83
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| 致谢 | 第83-85
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| 中文摘要 | 第85-89
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| Abstract | 第89-93
页 |
