论文目录 | |
中文摘要 | 第15-17页 |
ABSTRACT | 第17-19页 |
缩略语 | 第19-20页 |
前言 | 第20-32页 |
一 黏膜疫苗接种 | 第20-21页 |
二 疫苗口服吸收和免疫反应的生理基础 | 第21页 |
三 疫苗口服免疫的研究进展 | 第21-23页 |
四 脂质体在疫苗黏膜免疫中的应用 | 第23页 |
五 胆盐在疫苗黏膜免疫中的应用 | 第23-24页 |
六 多囊脂质体作为疫苗黏膜免疫载体的应用 | 第24-25页 |
七 多糖包被在疫苗黏膜免疫中的应用 | 第25-27页 |
八 立题依据 | 第27页 |
参考文献 | 第27-32页 |
第一章 牛血清白蛋白及其制剂分析方法的建立 | 第32-41页 |
仪器与材料 | 第32页 |
1 BCA法测定牛血清白蛋白浓度 | 第32-33页 |
· 溶液的配制 | 第32页 |
· 紫外扫描 | 第32-33页 |
· 标准曲线 | 第33页 |
· 精密度、准确度 | 第33页 |
2 牛血清白蛋白脂质体中牛血清白蛋白的分析方法 | 第33-38页 |
· 紫外扫描 | 第33-34页 |
· 乙醇沉淀-BCA法测定脂质体样品中BSA的含量 | 第34-38页 |
· BSA-水-乙醇三相图的绘制 | 第35页 |
· 乙醇用量对脂类溶解能力的考察 | 第35-36页 |
· 实验方法 | 第36页 |
· 方法专属性 | 第36页 |
· 标准曲线 | 第36-37页 |
· 精密度 | 第37页 |
· 方法回收率 | 第37页 |
· 加样回收率 | 第37-38页 |
· 其他试剂的干扰 | 第38页 |
3 讨论 | 第38-39页 |
4 本章小结 | 第39-40页 |
参考文献 | 第40-41页 |
第二章 牛血清白蛋白胆盐脂质体的制备及性质研究 | 第41-59页 |
仪器与材料 | 第41页 |
1 牛血清白蛋白胆盐脂质体(BSA NaDC-Lip)包封率的测定方法 | 第41-42页 |
· 高速离心法分离胆盐脂质体中游离的牛血清白蛋白 | 第41-42页 |
· 胆盐脂质体中总药量的测定方法 | 第42页 |
· 方法专属性 | 第42页 |
· 标准曲线 | 第42页 |
· 精密度 | 第42页 |
· 方法回收率 | 第42页 |
2 NaDC-Lip的制备及处方优化 | 第42-47页 |
· 制备方法 | 第42-43页 |
· 考察NaDC-Lip的稳定性来筛选处方 | 第43-47页 |
· 钙黄绿素激发波长与发射波长的确定 | 第43-44页 |
· 钙黄绿素标准曲线的绘制 | 第44页 |
· 精密度 | 第44页 |
· 凝胶过滤法分离胆盐脂质体和游离药物 | 第44页 |
· 荧光自淬灭法测定钙黄绿素的释放 | 第44-45页 |
· 总脂量对胆盐脂质体稳定性的影响 | 第45页 |
· 胆固醇与磷脂比(w/w)对胆盐脂质体稳定性的影响 | 第45-46页 |
· 脱氧胆酸钠与脂相的摩尔比对胆盐脂质体稳定性的影响 | 第46-47页 |
3 胆盐脂质体相关理化性质研究 | 第47-50页 |
· 外观形态 | 第47-48页 |
· 粒径及粒径分布 | 第48-49页 |
· Zeta电位测定 | 第49页 |
· 包封率测定 | 第49-50页 |
4 脱氧胆酸钠与磷脂的相互作用研究 | 第50-56页 |
· 浊度变化 | 第50-52页 |
· 实验方法 | 第50-51页 |
· 实验结果 | 第51页 |
· 讨论 | 第51-52页 |
· 染料氯化松泊氰醇(PIN)特征光谱研究脱氧胆酸钠与磷脂的相互作用 | 第52-55页 |
· 实验方法 | 第52页 |
· 实验结果及讨论 | 第52-55页 |
· 脱氧胆酸钠在脂质体膜上的分布 | 第55-56页 |
5 本章小结 | 第56页 |
参考文献 | 第56-59页 |
第三章 棕榈酰甘露聚糖锚定的牛血清白蛋白胆盐脂质体的研究 | 第59-77页 |
仪器与材料 | 第59-60页 |
1 棕榈酰甘露聚糖(OPM)的合成与表征 | 第60-64页 |
· OPM的合成 | 第60页 |
· OPM的红外光谱(IR) | 第60-61页 |
· OPM的~1H NMR谱 | 第61-64页 |
2 OPM锚定的牛血清白蛋白胆盐脂质体(BSA NaDC-Lip)的制备和性质 | 第64-67页 |
· OPM锚定的BSA NaDC-Lip的制备 | 第64页 |
· 聚合物OPM对胆盐脂质体的稳定性影响 | 第64-65页 |
· 实验方法 | 第64-65页 |
· 结果与讨论 | 第65页 |
· OPM体外配基结合特异性优化OPM的包覆浓度 | 第65-67页 |
3 OPM锚定的BSA NaDC-Lip相关理化性质研究 | 第67-70页 |
· 外观形态 | 第67-68页 |
· 粒径及粒径分布 | 第68页 |
· Zeta电位 | 第68-70页 |
4 SDS凝胶电泳考察载体制备过程中BSA的完整性 | 第70-72页 |
· 原理 | 第70页 |
· 试剂配制 | 第70页 |
· 实验方法 | 第70-71页 |
· 结果与讨论 | 第71-72页 |
5 稳定性考察 | 第72-73页 |
· 释放介质的配制 | 第72页 |
· 实验方法 | 第72-73页 |
· 实验结果与讨论 | 第73页 |
6 OPM与胆盐脂质体作用方式的探讨 | 第73-74页 |
7 本章小结 | 第74-75页 |
参考文献 | 第75-77页 |
第四章 免疫学实验研究 | 第77-100页 |
仪器与材料 | 第77页 |
1 免疫方案和样品采集 | 第77-79页 |
· 实验分组 | 第77页 |
· 免疫方案 | 第77-78页 |
· 样品采集 | 第78-79页 |
· 血清样品采集 | 第78页 |
· 唾液采集 | 第78页 |
· 肠道洗液采集 | 第78-79页 |
2 ELISA实验试剂配置 | 第79页 |
3 ELISA实验条件的选择 | 第79-92页 |
· 辣根过氧化酶标记的山羊抗小鼠IgG稀释度的优化 | 第80-82页 |
· 实验方法 | 第80-81页 |
· 实验结果与讨论 | 第81-82页 |
· 辣根过氧化酶标记的山羊抗小鼠IgG1和IgG2a稀释度的优化 | 第82-85页 |
· 实验方法 | 第82-83页 |
· 实验结果与讨论 | 第83-85页 |
· 辣根过氧化酶标记的山羊抗小鼠IgA稀释度的优化 | 第85-86页 |
· 实验方法 | 第85页 |
· 实验结果与讨论 | 第85-86页 |
· 抗原BSA浓度的优化 | 第86-88页 |
· 实验方法 | 第86-87页 |
· 实验结果与讨论 | 第87-88页 |
· 酶标抗体作用时间的优化 | 第88-89页 |
· 实验方法 | 第88-89页 |
· 实验结果与讨论 | 第89页 |
· 底物作用时间的优化 | 第89-91页 |
· 实验方法 | 第89-90页 |
· 实验结果与讨论 | 第90-91页 |
· 洗涤次数的优化 | 第91-92页 |
· 实验方法 | 第91页 |
· 实验结果与讨论 | 第91-92页 |
4 ELISA实验测定免疫后小鼠体内抗体 | 第92-97页 |
· 免疫小鼠血液中IgG滴度测定 | 第92-94页 |
· 实验方法 | 第92-93页 |
· 实验结果与讨论 | 第93-94页 |
· 免疫小鼠唾液、肠液IgA滴度测定 | 第94-96页 |
· 免疫小鼠血液中IgG1/IgG2a测定 | 第96-97页 |
5 本章小结 | 第97-98页 |
参考文献 | 第98-100页 |
第五章 N-三甲基壳聚糖包覆牛血清白蛋白多囊脂质体的研究 | 第100-134页 |
仪器与材料 | 第100-101页 |
1 牛血清白蛋白多囊脂质体(BSA MVLs)包封率的测定方法 | 第101-102页 |
· BSA MVLs包封药物的分离测定方法 | 第101页 |
· BSA MVLs总药物的测定方法 | 第101页 |
· 方法专属性 | 第101页 |
· 标准曲线 | 第101-102页 |
· 精密度 | 第102页 |
· 回收率 | 第102页 |
2 牛血清白蛋白多囊脂质体的制备 | 第102-109页 |
· 制备方法 | 第102-103页 |
· 制备条件的选择 | 第103-105页 |
· 乳化条件的优化 | 第103-105页 |
· 氮气除有机溶剂的速度 | 第105页 |
· 温度 | 第105页 |
· 处方筛选 | 第105-109页 |
· 内外水相的pH值 | 第105-106页 |
· 磷脂的总量 | 第106页 |
· 荷电磷脂的影响 | 第106-108页 |
· 胆固醇与磷脂的质量比 | 第108页 |
· 三油酸甘油酯(TO)的用量 | 第108-109页 |
3 N-三甲基壳聚糖(TMC)包覆的牛血清白蛋白多囊脂质体的研究 | 第109-127页 |
· N-三甲基壳聚糖(TMC)的合成与表征 | 第109-111页 |
· N-三甲基壳聚糖(TMC)的合成 | 第109页 |
· TMC的红外光谱(IR) | 第109-110页 |
· TMC的~1H NMR谱 | 第110-111页 |
· TMC包覆牛血清白蛋白多囊脂质体的制备方法研究 | 第111-114页 |
· 加入顺序 | 第111-112页 |
· 加入速度 | 第112页 |
· TMC溶液与多囊脂质体溶液的体积比 | 第112页 |
· 磷脂浓度 | 第112-113页 |
· TMC的浓度 | 第113页 |
· TMC包覆牛血清白蛋白多囊脂质体的制备方法 | 第113-114页 |
· 讨论 | 第114页 |
· 多囊脂质体对TMC耐受能力的考察 | 第114-116页 |
· TMC包覆浓度对calcein泄漏的影响 | 第114-115页 |
· TMC的孵育时间对calcein泄漏的影响 | 第115页 |
· 讨论 | 第115-116页 |
· TMC包覆效率的考察 | 第116-120页 |
· TMC标准曲线的绘制 | 第116页 |
· 精密度试验 | 第116页 |
· 回收率试验 | 第116-117页 |
· TMC的包覆效率 | 第117页 |
· TMC包覆多囊脂质体包覆浓度的优化 | 第117-118页 |
· TMC包覆多囊脂质体孵育时间的优化 | 第118-119页 |
· 讨论 | 第119-120页 |
· TMC包覆的牛血清白蛋白多囊脂质体的理化性质 | 第120-123页 |
· 形态 | 第120-121页 |
· 粒径 | 第121-122页 |
· Zeta电位 | 第122-123页 |
· TMC包覆的牛血清白蛋白多囊脂质体的制备过程对BSA完整性的影响 | 第123-124页 |
· 实验方法 | 第123页 |
· 实验结果及讨论 | 第123-124页 |
· TMC包覆的多囊脂质体体外稳定性考察 | 第124-126页 |
· 释放介质的配制 | 第124-125页 |
· 实验方法 | 第125页 |
· 实验结果及讨论 | 第125-126页 |
· TMC与MVL作用方式的探讨 | 第126-127页 |
4 免疫实验 | 第127-131页 |
· 免疫方案和样品采集 | 第128页 |
· 实验分组 | 第128页 |
· 免疫方案 | 第128页 |
· 样品采集 | 第128页 |
· ELISA实验试剂配置 | 第128页 |
· ELISA实验测定免疫后小鼠体内抗体 | 第128-131页 |
· 免疫小鼠血液中IgG滴度测定 | 第128-129页 |
· 免疫小鼠唾液、肠液IgA滴度测定 | 第129-130页 |
· 免疫小鼠血液中IgG1/IgG2a测定 | 第130-131页 |
5 本章小结 | 第131-132页 |
参考文献 | 第132-134页 |
全文结论 | 第134-136页 |
致谢 | 第136-137页 |
作者简介 | 第137页 |