论文目录 | |
| 摘要 | 第1-8
页 |
| ABSTRACT | 第8-10
页 |
| 致谢 | 第10-11
页 |
| 第一章 PEG化壳聚糖的合成和表征 | 第11-31
页 |
| 1 前言 | 第11-15
页 |
| 2 材料和仪器 | 第15-16
页 |
| · 材料 | 第15
页 |
| · 仪器 | 第15-16
页 |
| 3 实验方法 | 第16-20
页 |
| · mPEG琥珀酸单酯的合成 | 第16-17
页 |
| · mPEG-Su-COONSu的合成 | 第17
页 |
| · 壳聚糖-聚乙二醇的合成 | 第17-18
页 |
| · 壳聚糖的纯化 | 第17
页 |
| · 粘度法测定壳聚糖的分子量 | 第17-18
页 |
| · 壳聚糖-聚乙二醇接枝物的合成 | 第18-19
页 |
| · 产物的表征 | 第19-20
页 |
| · 盐酸羟胺反应 | 第19
页 |
| · 产物的红外、核磁表征 | 第19
页 |
| · PEG化壳聚糖的接枝率测定 | 第19-20
页 |
| 4 结果与讨论 | 第20-31
页 |
| · mPEG琥珀酸单酯 | 第20-21
页 |
| · 盐酸羟胺反应 | 第20
页 |
| · FT-IR分析 | 第20-21
页 |
| · mPEG-Su-COONSu | 第21-22
页 |
| · FT-IR分析 | 第21
页 |
| · ~(13)C NMR分析 | 第21-22
页 |
| · 壳聚糖-聚乙二醇接枝物 | 第22-26
页 |
| · 壳聚糖分子量 | 第22-23
页 |
| · FT-IR分析 | 第23-25
页 |
| · ~1H-NMR分析 | 第25-26
页 |
| · PEG化壳聚糖的接枝率 | 第26-31
页 |
| 第二章 PEG化壳聚糖在水中溶胀行为的研究 | 第31-41
页 |
| 1 前言 | 第31-32
页 |
| 2 材料和仪器 | 第32-33
页 |
| · 材料 | 第32
页 |
| · 仪器 | 第32-33
页 |
| 3 实验方法 | 第33-34
页 |
| · 不同分子量、不同接枝率的PEG化壳聚糖的合成 | 第33
页 |
| · mPEG琥珀酸单酯和mPEG-Su-COONSu的合成 | 第33
页 |
| · 不同分子量、不同接枝率的PEG化壳聚糖的合成 | 第33
页 |
| · PEG化壳聚糖的溶胀度和溶解度的测定 | 第33-34
页 |
| · 浊度的测定 | 第34
页 |
| 4 结果与讨论 | 第34-41
页 |
| · 不同分子量、不同接枝率的PEG化壳聚糖的合成及其分子量 | 第34-35
页 |
| · PEG化壳聚糖的溶胀度和溶解度 | 第35-37
页 |
| · 浊度 | 第37-41
页 |
| 第三章 PEGFP-N1质粒／PEG化壳聚糖自聚集纳米粒在HELA细胞上转染的初步研究 | 第41-57
页 |
| 1 前言 | 第41-43
页 |
| 2 材料和仪器 | 第43-44
页 |
| · 材料 | 第43-44
页 |
| · 仪器 | 第44
页 |
| 3 实验方法 | 第44-49
页 |
| · pEGFP-N1质粒的制备与验证 | 第44-48
页 |
| · 感受态细胞的制备 | 第44-45
页 |
| · 质粒碱裂解法 | 第45-46
页 |
| · 聚乙二醇沉淀纯化质粒DNA | 第46-48
页 |
| · 质粒的定量 | 第48
页 |
| · PEG化的壳聚糖／DNA纳米粒的制备 | 第48
页 |
| · PEG化壳聚糖／DNA纳米粒在Hela细胞体外转染 | 第48-49
页 |
| · 材料 | 第48-49
页 |
| · Hela细胞的培养 | 第49
页 |
| · 细胞摄取 | 第49
页 |
| 4 结果和讨论 | 第49-57
页 |
| · pEGFP-N1质粒 | 第49-51
页 |
| · PEG化的壳聚糖／DNA纳米粒 | 第51-52
页 |
| · 壳聚糖／DNA纳米粒在Hela细胞体外摄取 | 第52-57
页 |
| 第四章 PEG化壳聚糖修饰的环孢素A纳米粒的制备及其物理化学性质的考察 | 第57-73
页 |
| 1 前言 | 第57-58
页 |
| 2 材料与仪器 | 第58-59
页 |
| · 材料 | 第58-59
页 |
| · 仪器 | 第59
页 |
| 3 实验方法 | 第59-61
页 |
| · 分析方法的建立 | 第59-60
页 |
| · 检测波长的选择 | 第59
页 |
| · 流动相的选择 | 第59-60
页 |
| · 柱温的选择 | 第60
页 |
| · HPLC标准曲线的建立 | 第60
页 |
| · 环孢素A纳米粒的制备 | 第60
页 |
| · 包封产率和载药量的测定 | 第60-61
页 |
| · 环孢素A纳米粒形态和粒径测定 | 第61
页 |
| · 体外释放的的研究 | 第61
页 |
| · PBS溶液的配制 | 第61
页 |
| · 体外释放考察 | 第61
页 |
| 4 结果与讨论 | 第61-73
页 |
| · 分析方法 | 第61-64
页 |
| · 检测波长 | 第61-62
页 |
| · 流动相 | 第62-63
页 |
| · 柱温 | 第63
页 |
| · 环孢素标准曲线 | 第63-64
页 |
| · 环孢素纳米粒 | 第64-66
页 |
| · PEG化壳聚糖修饰的环孢素纳米粒的包封率和载药量 | 第66
页 |
| · PEG化壳聚糖修饰的环孢素纳米粒的形态、粒径 | 第66-70
页 |
| · PEG化壳聚糖修饰的环孢素纳米粒的体外释放 | 第70-73
页 |
| 第五章 PEG化壳聚糖修饰的环孢素纳米粒家兔药动学研究 | 第73-83
页 |
| 1 前言 | 第73-74
页 |
| 2 材料与仪器 | 第74-75
页 |
| · 材料 | 第74
页 |
| · 仪器 | 第74-75
页 |
| 3 实验方法 | 第75-77
页 |
| · 检测波长的选择 | 第75
页 |
| · 流动相的确定 | 第75
页 |
| · 血样的提取方法 | 第75
页 |
| · 标准曲线的测定 | 第75-76
页 |
| · 萃取回收率测定 | 第76
页 |
| · 回收试验和精密度的测定 | 第76
页 |
| · 家兔体内的药动学研究 | 第76-77
页 |
| 4 结果和讨论 | 第77-83
页 |
| · 检测波长 | 第77-78
页 |
| · 流动相 | 第78-79
页 |
| · 血样的标准曲线和药物萃取回收率 | 第79
页 |
| · 回收率和精密度 | 第79-80
页 |
| · 家兔体内的药动学 | 第80-83
页 |
| 第六章 结束语 | 第83-85
页 |
| 综述 壳聚糖纳米粒的研究进展 | 第85-113
页 |
| 作者简历 | 第113
页 |
