论文目录 | |
| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-13页 |
| 第一章 绪论 | 第13-36页 |
| · 缺血性脑卒中动物模型的研究现状 | 第14-16页 |
| · 动物模型的重要性 | 第14-15页 |
| · 采用动物模型的优点 | 第15-16页 |
| · 常用的脑缺血动物模型 | 第16-20页 |
| · 全脑缺血模型 | 第16-17页 |
| · 局灶性脑缺血模型 | 第17-19页 |
| · 小鼠脑缺血模型 | 第19-20页 |
| · 缺血性脑卒中模型动物的选择 | 第20-21页 |
| · 脑部血管结构的研究意义 | 第21-23页 |
| · 脑部血管结构的研究背景 | 第21-22页 |
| · 缺血性脑卒中后脑血管改变 | 第22-23页 |
| · 脑部血管结构的监测手段 | 第23页 |
| · 脑部血管结构成像技术概述 | 第23-27页 |
| · 常用血管成像技术简介 | 第23-26页 |
| · 常用检查技术的优点及局限性 | 第26-27页 |
| · 同步辐射光源血管成像系统的建立 | 第27-36页 |
| · 同步辐射光源成像发展概述 | 第27-28页 |
| · 同步辐射X线吸收成像在血管成像方面的早期研究 | 第28-35页 |
| · 建立同步辐射光源血管成像系统的意义 | 第35-36页 |
| 第二章 同步辐射光源血管成像对大鼠脑部血管的形态学研究 | 第36-52页 |
| · 引言 | 第36页 |
| · 研究目的 | 第36-37页 |
| · 实验动物和材料 | 第37-38页 |
| · 实验动物及试剂 | 第37页 |
| · 实验仪器 | 第37-38页 |
| · 实验方法 | 第38-45页 |
| · 应用不同造影剂在体观察大鼠脑部血管形态与结构 | 第39-40页 |
| · 同步辐射成像获取图像步骤 | 第40-45页 |
| · 实验结果 | 第45-47页 |
| · 硫酸钡在体大鼠脑部血管成像 | 第45-47页 |
| · 非离子型碘大鼠活体实时脑部血管成像 | 第47页 |
| · 分析与讨论 | 第47-51页 |
| · 两种不同造影剂血管成像的特点 | 第48-49页 |
| · 非离子型碘造影剂成像参数 | 第49-50页 |
| · 图像后处理方法的优化 | 第50-51页 |
| · 本章小结 | 第51-52页 |
| 第三章 缺血性脑卒中大鼠线栓模型制备的同步辐射微血管成像研究 | 第52-69页 |
| · 引言 | 第52-55页 |
| · 缺血性脑卒中大鼠线栓模型研究背景 | 第53-55页 |
| · 针对不同线栓性状的研究 | 第55页 |
| · 研究目的 | 第55-56页 |
| · 预实验材料和方法 | 第56-61页 |
| · 栓线处理 | 第56页 |
| · 实验动物准备 | 第56-57页 |
| · 同步辐射光源血管成像参数 | 第57-58页 |
| · 预实验结果 | 第58-61页 |
| · 线栓模型改良实验材料与方法 | 第61-67页 |
| · 实验动物准备 | 第61页 |
| · 线栓准备 | 第61页 |
| · 大鼠脑离体样本TTC染色 | 第61-62页 |
| · 脑梗塞体积测量及计算 | 第62页 |
| · 其他 | 第62页 |
| · 实验结果 | 第62-67页 |
| · 讨论 | 第67-68页 |
| · 本章小结 | 第68-69页 |
| 第四章 缺血性脑卒中大鼠模型咬肌区域侧枝循环的微血管成像研究 | 第69-82页 |
| · 引言 | 第69-71页 |
| · 研究目的 | 第71页 |
| · 材料和方法 | 第71-73页 |
| · 实验动物 | 第71页 |
| · 实验方法 | 第71-73页 |
| · 实验结果 | 第73-75页 |
| · 同步辐射血管造影与MR成像结果 | 第73-75页 |
| · 咬肌区域存在侧枝循环的同步辐射血管成像依据 | 第75页 |
| · 分析与讨论 | 第75-81页 |
| · 本章小结 | 第81-82页 |
| 第五章 缺血性脑卒中大鼠模型中自体血管新生的微血管成像研究 | 第82-102页 |
| · 引言 | 第82-87页 |
| · 血管新生概念 | 第82页 |
| · 血管新生的主要类型 | 第82-84页 |
| · 血管新生的相关研究背景 | 第84-87页 |
| · 研究目的 | 第87页 |
| · MICRO-CT在血管成像方面的应用 | 第87-90页 |
| · MICRO-CT原理 | 第87-88页 |
| · MICRO-CT的应用 | 第88-89页 |
| · 大鼠脑血管MICROFIL灌注方法 | 第89-90页 |
| · MICRO-CT成像 | 第90页 |
| · 材料和方法 | 第90-92页 |
| · 实验动物 | 第90-91页 |
| · 检查方法 | 第91-92页 |
| · 图像后处理 | 第92页 |
| · 实验结果 | 第92-98页 |
| · MR检查结果 | 第92-93页 |
| · 同步辐射血管成像结果 | 第93-95页 |
| · MICRO-CT大鼠离体脑组织血管成像结果 | 第95-96页 |
| · 脑血管密度测量及血管树分析 | 第96-98页 |
| · 讨论 | 第98-101页 |
| · 本章小结 | 第101-102页 |
| 第六章 成年至老年高血压大鼠同步辐射血管成像的研究 | 第102-110页 |
| · 引言 | 第102-103页 |
| · 研究目的 | 第103-104页 |
| · 材料与方法 | 第104-105页 |
| · 实验动物 | 第104页 |
| · 检查方法及后处理 | 第104-105页 |
| · 实验结果 | 第105-109页 |
| · 预实验结果 | 第105-109页 |
| 本章小结 | 第109-110页 |
| 全文总结 | 第110-112页 |
| 参考文献 | 第112-120页 |
| 附录1 同步辐射血管成像原始数据进行背景减影的MATLAB程序 | 第120-121页 |
| 附录2 同步辐射血管成像原始数据进行时间减影的MATLAB程序 | 第121-122页 |
| 致谢 | 第122-124页 |
| 文献综述 | 第124-144页 |
| 参考文献 | 第131-144页 |
| 攻读博士学位期间已发表或录用的论文 | 第144-145页 |
| 附件 | 第145-147页 |
