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H5亚型禽流感病毒抗原捕捉ELISA诊断方法的建立
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H5亚型禽流感病毒抗原捕捉ELISA诊断方法的建立
论文目录
 
中文摘要第1-9 页
英文摘要第9-10 页
1 引言第10-18 页
　　· 禽流感病毒（AIV）简介第10-12 页
　　　　· AIV 形态结构第10-11 页
　　　　· AIV 生物学特性第11 页
　　　　· 高致病性禽流感病毒（HPAIV）的生物学特性第11-12 页
　　· HPAI 的危害及公共卫生学意义第12-15 页
　　· 高致病性禽流感的诊断方法及研究进展第15-16 页
　　· 本研究的目的和意义第16-18 页
2 材料与方法第18-25 页
　　· 材料第18-19 页
　　　　· 病毒第18 页
　　　　· 单抗第18 页
　　　　· 实验动物第18 页
　　　　· 实验用阴阳性对照抗原第18 页
　　　　· 主要仪器设备及耗材第18 页
　　　　· 主要试剂和溶液第18-19 页
　　· 实验方法第19-25 页
　　　　· 多克隆抗体的制备第19-20 页
　　　　· 抗原捕捉ELISA 方法的建立第20-22 页
　　　　· 检测病毒尿囊液阴阳性判定标准的确定第22 页
　　　　· 特异性交叉试验第22 页
　　　　· 已知阳性尿囊液夹心ELISA 效价的测定第22 页
　　　　· H5 亚型高致病性禽流感病毒人工感染样本的检测第22 页
　　　　· 人工感染样本阴阳性判定标准的确定及检测靶器官的选择第22 页
　　　　· 敏感性试验第22-23 页
　　　　· 重复性试验第23 页
　　　　· 试剂盒的组装及保存期试验第23-25 页
3 结果与分析第25-51 页
　　· 单抗和酶标抗体最佳结合稀释度的确定第25-26 页
　　· 抗原和单抗最佳结合稀释度的确定第26 页
　　· 多抗和抗原最佳结合稀释度的确定第26-27 页
　　· 捕获抗体和单抗最佳稀释度的确定第27-28 页
　　· 包被液种类的选择第28-29 页
　　· 包被时间的选择第29 页
　　· 不同封闭液的选择第29-30 页
　　· 封闭时间的确定第30-31 页
　　· 单抗作用时间的确定第31-32 页
　　· 酶标抗体作用时间的确定第32-33 页
　　· 检测病毒尿囊液阴阳性判定标准的确定第33-34 页
　　· 特异性交叉试验第34 页
　　· 已知阳性尿囊液夹心ELISA 效价的测定第34-35 页
　　· H5 亚型高致病性禽流感病毒人工感染样本的检测第35-38 页
　　· 人工感染样本阴阳性判定标准的确定及检测靶器官的选择第38-41 页
　　· 敏感性实验第41-42 页
　　· 重复性实验第42-44 页
　　· 试剂盒保存期试验第44-49 页
　　　　· 酶标板的保存期试验第44-46 页
　　　　· 阳性对照抗原的灭活及保存第46-47 页
　　　　· 单抗和酶标二抗的保存及稳定性试验第47-48 页
　　　　· 试剂盒整体保存期试验第48-49 页
　　· 小结第49-51 页
　　　　· 应用抗原捕捉ELISA 方法检测临床组织样本的操作步骤第49-50 页
　　　　· 阴阳性判定标准第50-51 页
4 讨论第51-54 页
　　· 关于抗原捕捉ELISA 检测方法的建立第51-52 页
　　　　· 技术基础第51 页
　　　　· 可行性第51 页
　　　　· 应用前景第51-52 页
　　· ELISA 反应条件的优化第52-54 页
　　　　· ELISA 反应形式的选择第52 页
　　　　· 包被液的选择第52 页
　　　　· 温育温度的选择第52-53 页
　　　　· 封闭液的选择第53 页
　　　　· 试剂盒的稳定保存第53-54 页
5 结论第54-55 页
致谢第55-56 页
参考文献第56-61 页
攻读硕士期间发表的学术论文第61页

本篇论文共61页，点击这进入下载页面。
 
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