论文目录 | |
| 摘要 | 第1-5
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| ABSTRACT | 第5-12
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| 第1章 引言 | 第12-15
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| 第2章 材料与仪器 | 第15-20
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| · 实验动物 | 第15
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| · 实验试剂 | 第15-18
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| · 主要购置试剂 | 第15-16
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| · 主要配置试剂 | 第16-18
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| · 实验仪器 | 第18-20
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| 第3章 方法 | 第20-29
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| · 实验思路 | 第20
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| · 体内实验 | 第20-22
页 |
| · 实验分组 | 第20-21
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| · 兔体内 CVS 模型的建立 | 第21
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| · 选择性脑基底动脉造影及血管直径的测量 | 第21-22
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| · Western blotting 技术检测Cx43 蛋白表达的变化 | 第22-25
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| · 总蛋白样品制备 | 第22
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| · 样品蛋白含量的测定 | 第22-23
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| · 配制 5%积层胶及 8%分离胶 | 第23
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| · 灌胶及上样 | 第23
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| · 垂直电泳 | 第23
页 |
| · 转膜 | 第23-24
页 |
| · 目标蛋白免疫反应 | 第24
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| · 目标蛋白化学发光及曝光 | 第24
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| · 膜再生 | 第24-25
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| · 内参蛋白免疫反应 | 第25
页 |
| · 内参蛋白化学发光及曝光 | 第25
页 |
| · 图像分析 | 第25
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| · 体外游离脑血管环张力实验 | 第25-26
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| · 实验分组 | 第25-26
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| · 实验系统连接和仪器参数设置 | 第26
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| · 兔基底动脉环的制备 | 第26
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| · 体外脑血管条孵育实验 | 第26-28
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| · 实验分组及步骤 | 第27-28
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| · 兔体外基底动脉条的制备 | 第28
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| · 数据统计分析 | 第28-29
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| 第4章 结果 | 第29-33
页 |
| · 体内实验 | 第29-30
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| · 体内实验脑血管造影 | 第29
页 |
| · CVS 后各组 Cx43 蛋白表达的变化 | 第29-30
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| · 体外游离脑血管环张力实验 | 第30-31
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| · PGF_(2a)诱导的基底动脉环张力变化 | 第30
页 |
| · PGF_(2a)+DETA-NO 诱导的血管环张力变化 | 第30-31
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| · PGF_(2a)+ODQ 诱导的血管环张力变化 | 第31
页 |
| · PGF_(2a)+ODQ+DETA-NO 诱导的血管环张力变化 | 第31
页 |
| · PGF_(2a)+DMSO 诱导的血管环张力变化 | 第31
页 |
| · PGF_(2a)+CBX 诱导的血管环张力变化 | 第31
页 |
| · 体外脑血管条孵育实验 | 第31-33
页 |
| · PGF_(2a)孵育后BA条Cx43蛋白表达的变化 | 第31
页 |
| · PGF_(2a)+DETA-NO 孵育后 BA 条 Cx43 蛋白表达的变 | 第31
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| · PGF_(2a)+DETA-NO+ODQ 孵育后BA 条Cx43 表达的变化 | 第31
页 |
| · PGF_(2a)+ODQ 孵育后BA 条Cx43 表达的变化 | 第31
页 |
| · PGF_(2a)+DMSO 孵育后BA 条Cx43 表达的变化 | 第31
页 |
| · GJ 阻断剂孵育后基底动脉条Cx43 蛋白表达的变化 | 第31-33
页 |
| 第5章 讨论 | 第33-41
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| · 蛛网膜下腔出血(SAH)后脑血管痉挛(CVS) | 第33
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| · CVS 研究仍存在的问题 | 第33-34
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| · NO 的生物特性及 SAH 后脑血管中 NO 的变化 | 第34-37
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| · NO 的生物特性 | 第34
页 |
| · SAH 后脑血管中NO 的变化 | 第34-37
页 |
| · 缝隙连接(gap junction GJ) | 第37-40
页 |
| · 细胞GJ 的功能及调节 | 第37-38
页 |
| · 缝隙连接蛋白43 | 第38-39
页 |
| · NO对Cx43及GJ功能调节的研究 | 第39-40
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| · 展望 | 第40-41
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| 第6章 结论 | 第41-42
页 |
| 致谢 | 第42-43
页 |
| 参考文献 | 第43-49
页 |
| 附图 | 第49-53
页 |
| 综述 | 第53-59
页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第59
页 |
