论文目录 | |
摘要 | 第1-4页 |
Abstract | 第4-11页 |
第1章 前言 | 第11-21页 |
1.1 地下鼠 | 第11-14页 |
1.1.1 地下鼠的生物学特及其征生境特点 | 第11-12页 |
1.1.2 地下鼠对低氧环境的适应 | 第12-14页 |
1.2 甘肃鼢鼠 | 第14-16页 |
1.2.1 甘肃鼢鼠概述 | 第14页 |
1.2.2 甘肃鼢鼠对洞道环境适应的研究进展 | 第14-16页 |
1.3 低氧应激与抗氧化系统 | 第16-18页 |
1.3.1 低氧应激 | 第16页 |
1.3.2 低氧应激对抗氧化系统的影响 | 第16-18页 |
1.3.3 谷胱甘肽过氧化物酶 | 第18页 |
1.4 研究目的和意义 | 第18-21页 |
第2章 比较低氧应激对甘肃鼢鼠和SD大鼠脑和肝中SOD、CAT、GPx酶活性及T-AOC、MDA含量的影响 | 第21-37页 |
2.1 实验材料 | 第22-23页 |
2.1.1. 实验动物 | 第22页 |
2.1.2 低氧应激模型 | 第22页 |
2.1.3 主要仪器 | 第22-23页 |
2.1.4 主要试剂 | 第23页 |
2.2 实验方法 | 第23-28页 |
2.2.1 样品制备 | 第23页 |
2.2.2 T-SOD活力测定(羟胺淘 | 第23-24页 |
2.2.3 CAT活力测定(可见光法) | 第24-25页 |
2.2.4 GSH-PX(GPx)活力测定 | 第25-26页 |
2.2.5 T-AOC测定 | 第26页 |
2.2.6 MDA含量的测定(TBA法) | 第26-27页 |
2.2.7 蛋白含量测定(考马斯亮蓝法) | 第27-28页 |
2.2.8 数据分析 | 第28页 |
2.3 结果 | 第28-33页 |
2.3.1 超氧化物歧化酶(SOD)活性的比较 | 第28-29页 |
2.3.2 过氧化氢酶(CAT)活性的比较 | 第29页 |
2.3.3 谷胱甘肽过氧化物酶(GPx)活性的比较 | 第29-31页 |
2.3.4 总抗氧化能力(T-AOC)的比较 | 第31-32页 |
2.3.5 丙二醛(MDA)含量的比较 | 第32-33页 |
2.4 讨论 | 第33-37页 |
第3章 比较低氧应激对甘肃鼢鼠和SD大鼠脑和肝中SOD1、CAT、GPx1 mRN表达量的影响 | 第37-49页 |
3.1 实验材料 | 第37-39页 |
3.1.1 实验动物 | 第37-38页 |
3.1.2 低氧应激模型 | 第38页 |
3.1.3 样品采集 | 第38页 |
3.1.4 主要仪器 | 第38页 |
3.1.5 主要试剂 | 第38-39页 |
3.2 实验方法 | 第39-43页 |
3.2.1 总RNA的提取与质量鉴定 | 第39-40页 |
3.2.2 反转录合成cDNA第一链 | 第40-41页 |
3.2.3 荧光定量PCR引物设计与检测 | 第41-42页 |
3.2.4 荧光定量PCR | 第42-43页 |
3.2.5 数据分析 | 第43页 |
3.3 结果 | 第43-46页 |
3.3.1 超氧化物歧化酶(SOD1)mRNA表达量的比较 | 第43-44页 |
3.3.2 过氧化氢酶(CAT)mRNA表达量的比较 | 第44-45页 |
3.3.3 谷胱甘肽过氧化物酶(GPx1)mRNA表达量的比较 | 第45-46页 |
3.4 讨论 | 第46-49页 |
第4章 甘肃鼢鼠GPx1基因克隆及蛋白序列生物信息学分析 | 第49-77页 |
4.1 实验材料 | 第50-51页 |
4.1.1 实验对象 | 第50页 |
4.1.2 主要仪器 | 第50页 |
4.1.3 主要试剂 | 第50-51页 |
4.2 实验方法 | 第51-56页 |
4.2.1 样品采集 | 第51页 |
4.2.2 总RNA的提取与cDNA第一链的合成 | 第51页 |
4.2.3 甘肃鼢鼠GPx1cDNA序列的合成 | 第51-54页 |
4.2.4 甘肃鼢鼠GPx1基因的核苷酸序列及生物信息学分析 | 第54-56页 |
4.3 结果 | 第56-73页 |
4.3.1 提取RNA质量检测 | 第56-57页 |
4.3.2 甘肃鼢鼠GPx1基因cDNA扩增电泳检测 | 第57页 |
4.3.3 甘肃鼢鼠GPx1基因的核苷酸序列及生物信息学分析 | 第57-73页 |
4.4 讨论 | 第73-77页 |
结论 | 第77-79页 |
参考文献 | 第79-93页 |
致谢 | 第93-95页 |
攻读硕士学位期间的研究成果 | 第95页 |