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低氧应激下甘肃鼢鼠脑和肝中抗氧化酶的表达及GPx1基因克隆与生物信息学分析

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低氧应激下甘肃鼢鼠脑和肝中抗氧化酶的表达及GPx1基因克隆与生物信息学分析
论文目录
 
摘要第1-4页
Abstract第4-11页
第1章 前言第11-21页
  1.1 地下鼠第11-14页
    1.1.1 地下鼠的生物学特及其征生境特点第11-12页
    1.1.2 地下鼠对低氧环境的适应第12-14页
  1.2 甘肃鼢鼠第14-16页
    1.2.1 甘肃鼢鼠概述第14页
    1.2.2 甘肃鼢鼠对洞道环境适应的研究进展第14-16页
  1.3 低氧应激与抗氧化系统第16-18页
    1.3.1 低氧应激第16页
    1.3.2 低氧应激对抗氧化系统的影响第16-18页
    1.3.3 谷胱甘肽过氧化物酶第18页
  1.4 研究目的和意义第18-21页
第2章 比较低氧应激对甘肃鼢鼠和SD大鼠脑和肝中SOD、CAT、GPx酶活性及T-AOC、MDA含量的影响第21-37页
  2.1 实验材料第22-23页
      2.1.1. 实验动物第22页
    2.1.2 低氧应激模型第22页
    2.1.3 主要仪器第22-23页
    2.1.4 主要试剂第23页
  2.2 实验方法第23-28页
    2.2.1 样品制备第23页
    2.2.2 T-SOD活力测定(羟胺淘第23-24页
    2.2.3 CAT活力测定(可见光法)第24-25页
    2.2.4 GSH-PX(GPx)活力测定第25-26页
    2.2.5 T-AOC测定第26页
    2.2.6 MDA含量的测定(TBA法)第26-27页
    2.2.7 蛋白含量测定(考马斯亮蓝法)第27-28页
    2.2.8 数据分析第28页
  2.3 结果第28-33页
    2.3.1 超氧化物歧化酶(SOD)活性的比较第28-29页
    2.3.2 过氧化氢酶(CAT)活性的比较第29页
    2.3.3 谷胱甘肽过氧化物酶(GPx)活性的比较第29-31页
    2.3.4 总抗氧化能力(T-AOC)的比较第31-32页
    2.3.5 丙二醛(MDA)含量的比较第32-33页
  2.4 讨论第33-37页
第3章 比较低氧应激对甘肃鼢鼠和SD大鼠脑和肝中SOD1、CAT、GPx1 mRN表达量的影响第37-49页
  3.1 实验材料第37-39页
    3.1.1 实验动物第37-38页
    3.1.2 低氧应激模型第38页
    3.1.3 样品采集第38页
    3.1.4 主要仪器第38页
    3.1.5 主要试剂第38-39页
  3.2 实验方法第39-43页
    3.2.1 总RNA的提取与质量鉴定第39-40页
    3.2.2 反转录合成cDNA第一链第40-41页
    3.2.3 荧光定量PCR引物设计与检测第41-42页
    3.2.4 荧光定量PCR第42-43页
    3.2.5 数据分析第43页
  3.3 结果第43-46页
    3.3.1 超氧化物歧化酶(SOD1)mRNA表达量的比较第43-44页
    3.3.2 过氧化氢酶(CAT)mRNA表达量的比较第44-45页
    3.3.3 谷胱甘肽过氧化物酶(GPx1)mRNA表达量的比较第45-46页
  3.4 讨论第46-49页
第4章 甘肃鼢鼠GPx1基因克隆及蛋白序列生物信息学分析第49-77页
  4.1 实验材料第50-51页
    4.1.1 实验对象第50页
    4.1.2 主要仪器第50页
    4.1.3 主要试剂第50-51页
  4.2 实验方法第51-56页
    4.2.1 样品采集第51页
    4.2.2 总RNA的提取与cDNA第一链的合成第51页
    4.2.3 甘肃鼢鼠GPx1cDNA序列的合成第51-54页
    4.2.4 甘肃鼢鼠GPx1基因的核苷酸序列及生物信息学分析第54-56页
  4.3 结果第56-73页
    4.3.1 提取RNA质量检测第56-57页
    4.3.2 甘肃鼢鼠GPx1基因cDNA扩增电泳检测第57页
    4.3.3 甘肃鼢鼠GPx1基因的核苷酸序列及生物信息学分析第57-73页
  4.4 讨论第73-77页
结论第77-79页
参考文献第79-93页
致谢第93-95页
攻读硕士学位期间的研究成果第95页

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