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莱姆病螺旋体PCR-DHPLC图谱的建立及伯氏疏螺旋体OspA的表达纯化

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莱姆病螺旋体PCR-DHPLC图谱的建立及伯氏疏螺旋体OspA的表达纯化
论文目录
 
中文摘要第1-6页
Abstract第6-9页
目录第9-13页
第1章 绪论第13-20页
  · 莱姆病螺旋体研究进展第13-14页
  · 莱姆病螺旋体检测方法研究进展第14-17页
    · 直接检测第14页
    · 免疫学技术检测第14-16页
    · 分子生物技术检测第16-17页
  · DHPLC 检测技术研究进展第17-20页
    · DHPLC 原理第17-18页
    · DHPLC 特点第18页
    · DHPLC 的应用第18-20页
第2章 莱姆病螺旋体 PCR-DHPLC 检测方法的建立第20-36页
  · 试验材料第20-23页
    · 试验菌株第20-22页
    · 主要试剂第22页
    · 主要仪器第22-23页
  · 试验方法第23-26页
    · 试验菌株模板库的建立第23-24页
    · 引物的设计与合成第24页
    · 优化 PCR 通用扩增条件第24页
    · DHPLC 分析条件第24-25页
    · 特异性试验第25页
    · 灵敏度试验第25页
    · PCR-DHPLC 方法在实际中的应用第25-26页
  · 实验结果第26-36页
    · 引物设计第26-27页
    · PCR 反应结果第27页
    · PCR-DHPLC 柱温参数优化第27-31页
    · 莱姆病螺旋体 PCR-DHPLC 检测特异性试验结果第31页
    · 莱姆病螺旋体 PCR-DHPLC 灵敏性检测试验结果第31-32页
    · 莱姆病螺旋体标准图谱的建立第32-34页
    · PCR-DHPLC 对实际样品的检测结果第34-36页
第3章 伯氏疏螺旋体外膜蛋白 A 的原核表达及纯化第36-53页
  · 试验材料第36-39页
    · 试验菌株第36页
    · 主要试剂第36-37页
    · 主要仪器第37页
    · 试剂配制第37-39页
  · 试验方法第39-47页
    · 莱姆病伯氏疏螺旋体外膜蛋白的选取第39页
    · 重组伯氏疏螺旋体 pET-28b-rOspA 表达载体的构建第39-41页
      · OspA 片段的获得第39页
      · OspA 与 pMD-18T 连接转化第39页
      · 酶切 pMD-18T-OspA 及表达载体 pET-28b第39-40页
      · OspA 与表达载体 pET-28b 的连接转化第40-41页
      · pET-28b-rOspA 质粒抽提第41页
    · 原核表达载体 pET-28b-rOspA 的鉴定第41-42页
    · 重组伯氏疏螺旋体 pET28b-rOspA 的原核表达第42-44页
      · 重组伯氏疏螺旋体 pET28b-rOspA 的转化第42页
      · 诱导条件的选择第42-43页
      · 重组 pET28b-rOspA 诱导表达及表达形式的确定第43-44页
    · 重组质粒 pET28b-OspA 的 Western Blotting 检测第44-45页
      · 菌体蛋白质制备第44页
      · 蛋白质的定量第44页
      · SDS-PAGE 凝胶电泳及 PAGE 胶半干转印第44-45页
      · Western Blotting 检测第45页
    · 重组质粒 pET28b-OspA 融合蛋白的纯化第45-47页
      · 表达菌体的扩大培养第45-46页
      · 表达菌体的超声破碎及包涵体的溶解第46页
      · 镍柱亲和层析纯化包涵体第46-47页
  · 实验结果第47-53页
    · 莱姆病伯氏疏螺旋体外膜蛋白的选取第47-48页
    · 重组克隆载体和表达载体的鉴定第48-49页
    · 重组 pET-28b-rOspA 最佳表达条件的确定第49-51页
    · 重组 pET-28b-rOspA 表达形式的确定第51页
    · 重组质粒 pET-28b-rOspA 的 Western blotting 鉴定第51-52页
    · 重组质粒 pET-28b-rOspA 融合蛋白的纯化第52-53页
第4章 讨论第53-56页
第5章 结论第56-57页
参考文献第57-63页
作者简介第63-64页
致谢第64 页

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