论文目录 | |
| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-9页 |
| 中英文缩写对照 | 第9-13页 |
| 1 引言 | 第13-22页 |
| · 牛乳酪蛋白的营养价值 | 第13-14页 |
| · 牛乳酪蛋白水解多肽活性研究进展 | 第14-18页 |
| · 抗氧化活性肽的研究现状 | 第15-16页 |
| · 抗菌活性肽的研究现状 | 第16-18页 |
| · 人结肠腺癌Caco-2细胞系及其研究进展 | 第18-20页 |
| · Caco-2细胞系研究现状 | 第18-19页 |
| · 应用于营养物质的吸收研究进展 | 第19-20页 |
| · 本课题主要研究内容和技术路线 | 第20-22页 |
| 2 牛乳酪蛋白体外及体内胃肠消化水解研究 | 第22-45页 |
| · 材料试剂与仪器 | 第22-24页 |
| · 试验材料与试剂 | 第22-23页 |
| · 主要仪器与设备 | 第23-24页 |
| · 试验方法 | 第24-31页 |
| · 牛乳酪蛋白的模拟胃肠水解研究 | 第24-25页 |
| · 牛乳酪蛋白小鼠体内水解实验 | 第25页 |
| · 酪蛋白水解物的水解度测定 | 第25-26页 |
| · 酪蛋白水解液抗氧化及抗菌活性检测 | 第26-28页 |
| · 酪蛋白水解液SDS-PAGE电泳检测 | 第28-29页 |
| · 酪蛋白水解液Tricine-SDS-PAGE电泳检测 | 第29-30页 |
| · 水解液高效CE电泳检测 | 第30-31页 |
| · 水解液高效RP-HPLC检测 | 第31页 |
| · 结果与讨论 | 第31-43页 |
| · 不同水解时间酪蛋白水解情况分析 | 第31-34页 |
| · 酪蛋白水解液抗氧化及抗菌活性分析 | 第34-38页 |
| · SDS-PAGE电泳图结果分析 | 第38-40页 |
| · Tricine-SDS-PAGE电泳图结果分析 | 第40页 |
| · 高效CE电泳图谱分析 | 第40-41页 |
| · 高效RP-HPLC图谱分析 | 第41-42页 |
| · 小鼠胃肠水解的CE及RP-HPLC分析 | 第42-43页 |
| · 本章小结 | 第43-45页 |
| 3 小肠Caco-2细胞吸收模型建立及水解液吸收初步研究 | 第45-66页 |
| · 材料试剂与仪器 | 第45-48页 |
| · 试验材料与试剂 | 第45-46页 |
| · 主要仪器设备 | 第46-47页 |
| · 工作液的配置 | 第47-48页 |
| · 试验方法 | 第48-53页 |
| · 仪器、器材及无菌室处理 | 第48页 |
| · 细胞培养情况及形态观察 | 第48-49页 |
| · 细胞存活率的检测方法 | 第49页 |
| · 考察不同消化时间对细胞形态及细胞活性的影响 | 第49-50页 |
| · 不同浓度的牛乳酪蛋白水解液对细胞存活的影响 | 第50页 |
| · Transwell板培养、通透性检测及过膜实验 | 第50-52页 |
| · 高效CE电泳过膜物质分析 | 第52-53页 |
| · 高效RP-HPLC过膜物质分析 | 第53页 |
| · 结果与讨论 | 第53-65页 |
| · 细胞培养传代时间、消化时间、复苏及单层膜状态的确定 | 第53-58页 |
| · 不同浓度多肽水解液对细胞存活的影响 | 第58-60页 |
| · Caco-2单层膜通透性-细胞形态学结果分析 | 第60-61页 |
| · Caco-2单层膜通透性-TEER结果分析 | 第61页 |
| · Caco-2单层膜通透性-荧光黄结果分析 | 第61-62页 |
| · 高效CE电泳过膜物质图谱分析 | 第62-63页 |
| · 高效RP-HPLC过膜物质图谱分析 | 第63-65页 |
| · 本章小结 | 第65-66页 |
| 4 结论与展望 | 第66-69页 |
| · 牛乳酪蛋白体外及体内胃肠消化水解研究 | 第66-67页 |
| · 小肠细胞Caco-2模型建立及水解液吸收初步研究 | 第67页 |
| · 尚存问题 | 第67-68页 |
| · 展望 | 第68-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-78页 |
| 攻读学位期间所取得的学术成果 | 第78-79页 |
