论文目录 | |
摘要 | 第6-10页 |
Abstract | 第10-14页 |
缩写词索引 | 第14-26页 |
第一章 绪论 | 第26-40页 |
1.1 甲状腺癌危险因素 | 第26-29页 |
1.1.1 电离辐射 | 第26-27页 |
1.1.2 摄入碘 | 第27-28页 |
1.1.3 激素 | 第28页 |
1.1.4 其他甲状腺疾病 | 第28-29页 |
1.1.5 饮食、生活习惯和环境污染物 | 第29页 |
1.2 肿瘤微环境下炎症与癌症的关系 | 第29-30页 |
1.3 甲状腺乳头状癌和桥本氏甲状腺炎的关系 | 第30-33页 |
1.4 Th17细胞和Treg细胞 | 第33-36页 |
1.4.1 Th17细胞 | 第34-35页 |
1.4.2 Treg细胞 | 第35-36页 |
1.5 细胞因子和趋化因子 | 第36-38页 |
1.6 本论文研究的目的和意义 | 第38-40页 |
第二章 云南高原地区甲状腺乳头状癌危险因素回顾性研究 | 第40-60页 |
2.1 引言 | 第40-41页 |
2.2 实验方案 | 第41页 |
2.3 研究对象 | 第41页 |
2.4 研究方法 | 第41-42页 |
2.4.1 病案查阅内容 | 第41页 |
2.4.2 统计学方法 | 第41-42页 |
2.5 结果 | 第42-54页 |
2.5.1 一般资料 | 第42-43页 |
2.5.2 性别与PTC的关系 | 第43-44页 |
2.5.3 单因素分析 | 第44-51页 |
2.5.4 多因素分析 | 第51页 |
2.5.5 中国各海拔地区大规模数据回顾研究 | 第51-54页 |
2.6 讨论 | 第54-60页 |
第三章 云南高原地区儿童及青少年甲状腺乳头状癌危险因素回顾性研究 | 第60-70页 |
3.1 引言 | 第60页 |
3.2 研究方案 | 第60-61页 |
3.3 研究对象 | 第61页 |
3.4 研究方法 | 第61页 |
3.5 结果 | 第61-66页 |
3.5.1 一般资料 | 第61-62页 |
3.5.2 不同年龄段PTC组与BTD组临床病理特征的比较 | 第62-64页 |
3.5.3 儿童及青少年PTC合并与不合并HT的临床病理特征比较 | 第64-65页 |
3.5.4 儿童及青少年PTC危险因素的单因素及多因素分析 | 第65-66页 |
3.6 讨论 | 第66-70页 |
第四章 甲状腺乳头状癌合并桥本氏甲状腺炎组织Foxp3和RORγt的表达研究 | 第70-90页 |
4.1 引言 | 第70-71页 |
4.2 实验方案 | 第71页 |
4.3 材料 | 第71-72页 |
4.3.1 免疫组化染色组织 | 第71页 |
4.3.2 实时荧光定量组织 | 第71-72页 |
4.4 主要实验试剂及仪器 | 第72-73页 |
4.5 实验试剂配制 | 第73页 |
4.6 实验方法 | 第73-77页 |
4.6.1 免疫组织化学实验步骤 | 第73-74页 |
4.6.2 实时荧光定量PCR实验步骤 | 第74-77页 |
4.7 统计学方法 | 第77页 |
4.8 结果 | 第77-84页 |
4.8.1 PTC合并或不合并HT和良性甲状腺结节患者肿瘤微环境中的Foxp3及RORγt表达差异 | 第77-80页 |
4.8.2 PTC患者肿瘤微环境中Foxp3的表达与临床病理特征的关系 | 第80页 |
4.8.3 PTC合并HT患者肿瘤微环境中Foxp3的表达与临床病理特征的关系 | 第80-81页 |
4.8.4 PTC患者肿瘤微环境中RORyt的表达与临床病理特征的关系 | 第81页 |
4.8.5 PTC合并HT患者肿瘤微环境中RORγt的表达与临床病理特征的关系 | 第81-82页 |
4.8.6 PTC合并HT与不合并HT患者肿瘤微环境中Foxp3的表达差异 | 第82页 |
4.8.7 PTC合并HT与不合并HT患者肿瘤微环境中RORγt的表达差异 | 第82-83页 |
4.8.8 Foxp3与RORyt在PTC合并或不合并HT患者与淋巴结转移的相关性分析 | 第83页 |
4.8.9 Foxp3与RORγt在PTC合并或不合并HT患者与甲状腺功能的相关性分析 | 第83-84页 |
4.8.10 甲状腺癌组织Foxp3 mRNA的表达水平 | 第84页 |
4.8.11 甲状腺癌组织RORγt mRNA的表达水平 | 第84页 |
4.9 讨论 | 第84-89页 |
本章结论 | 第89-90页 |
第五章 人甲状腺乳头状癌细胞系对初始T淋巴细胞诱导分化的影响研究 | 第90-124页 |
5.1 引言 | 第90页 |
5.2 实验方案 | 第90-91页 |
5.3 材料 | 第91-92页 |
5.3.1 脐带血 | 第91页 |
5.3.2 细胞系 | 第91-92页 |
5.4 实验试剂及仪器 | 第92-95页 |
5.4.1 细胞培养及流式细胞术主要实验试剂及仪器 | 第92-93页 |
5.4.2 免疫蛋白印迹法(Western blot)主要实验试剂及仪器 | 第93-95页 |
5.5 实验试剂配制 | 第95-97页 |
5.5.1 完全细胞培养基配制 | 第95页 |
5.5.2 Western试剂配制 | 第95-97页 |
5.6 实验方法 | 第97-106页 |
5.6.1 脐血标本的采集 | 第97页 |
5.6.2 脐血单个核细胞的分离 | 第97-98页 |
5.6.3 甲状腺癌细胞系及正常滤泡上皮细胞系细胞培养 | 第98页 |
5.6.4 细胞共培养 | 第98-99页 |
5.6.5 流式细胞术检测Treg和Th17细胞比例 | 第99-104页 |
5.6.6 Western blot检测共培养后T淋巴细胞Foxp3和RORyt的蛋白表达 | 第104-106页 |
5.7 统计学方法 | 第106页 |
5.8 结果 | 第106-120页 |
5.8.1 流式细胞术检测脐带血初始T淋巴细胞与PTC细胞系(TPC-1和K1)共作用后Treg细胞的形成比例 | 第106-111页 |
5.8.2 流式细胞术检测脐带血初始T淋巴细胞与PTC细胞系(TPC-1和K1)共作用后Th17细胞的形成比例 | 第111-118页 |
5.8.3 Western blot半定量检测脐带血淋巴细胞与PTC细胞株共培养后淋巴细胞中Foxp3和RORγt蛋白的表达 | 第118-120页 |
5.9 讨论 | 第120-123页 |
本章结论 | 第123-124页 |
第六章 甲状腺乳头状癌合并桥本氏甲状腺炎患者Th1/Th2/Th17细胞因子及趋化因子表达研究 | 第124-144页 |
6.1 引言 | 第124-126页 |
6.2 实验方案 | 第126页 |
6.3 研究对象 | 第126页 |
6.4 研究方法 | 第126-127页 |
6.4.1 血清标本采集 | 第126-127页 |
6.4.2 流式细胞微球芯片捕获技术 | 第127页 |
6.5 实验试剂与仪器 | 第127-128页 |
6.6 统计学方法 | 第128页 |
6.7 结果 | 第128-136页 |
6.7.1 Th1/Th2/Th17细胞因子表达 | 第128页 |
6.7.2 Th1/Th2/Th17细胞因子与临床病理特征的相关性分析 | 第128页 |
6.7.3 趋化因子表达 | 第128-129页 |
6.7.4 趋化因子与临床病理特征的相关性分析 | 第129页 |
6.7.5 细胞因子与趋化因子的相关性分析 | 第129-136页 |
6.8 讨论 | 第136-142页 |
本章结论 | 第142-144页 |
第七章 人甲状腺乳头状癌合并桥本氏甲状腺炎的基因表达谱研究 | 第144-182页 |
7.1 引言 | 第144页 |
7.2 实验方案 | 第144-145页 |
7.3 实验对象 | 第145-146页 |
7.4 标本采集 | 第146页 |
7.5 实验试剂及仪器 | 第146-147页 |
7.6 实验方法 | 第147-153页 |
7.6.1 总RNA的提取 | 第147页 |
7.6.2 RNA质量控制 | 第147页 |
7.6.3 cRNA扩增 | 第147页 |
7.6.4 标记探针及杂交 | 第147-149页 |
7.6.5 表达谱芯片数据分析及统计方法 | 第149-152页 |
7.6.6 RT-PCR芯片验证 | 第152-153页 |
7.7 结果 | 第153-174页 |
7.7.1 总数据分析结果 | 第153-164页 |
7.7.2 与免疫相关的差异基因分析 | 第164-170页 |
7.7.3 qPCR验证 | 第170-174页 |
7.8 讨论 | 第174-181页 |
本章结论 | 第181-182页 |
第八章 全文总结与展望 | 第182-186页 |
8.1 全文总结 | 第182-184页 |
8.2 本研究创新点 | 第184页 |
8.3 展望 | 第184-186页 |
致谢 | 第186-188页 |
参考文献 | 第188-230页 |
附录A | 第230页 |