论文目录 | |
| 摘要 | 第1-11
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| Abstract | 第11-14
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| 第一章 文献综述 | 第14-48
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| 第1 节赤潮概述 | 第14-21
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| · 赤潮的定义 | 第14
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| · 赤潮生物种类 | 第14-15
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| · 赤潮藻的分型 | 第15-16
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| · 赤潮的危害 | 第16-17
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| · 中国赤潮发生的概况 | 第17-18
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| · 中国赤潮发生的特点 | 第18-20
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| · 中国赤潮研究的概况 | 第20-21
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| 第2节 赤潮藻的分子系统学研究及分子标记技术 | 第21-34
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| · 核糖体rRNA 基因和转录间隔区 | 第21-27
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| · 其它基因作为系统进化分析的分子标记 | 第27-29
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| · 多个基因区作为分子标识作系统进化分析 | 第29-30
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| · 分子标记(molecular markers) | 第30-34
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| 第3节 赤潮藻的分子生物学检测技术 | 第34-48
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| · 基于核酸提取的分子生物学检测技术 | 第34-40
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| · 全细胞杂交(whole cell hybridization) 技术 | 第40-44
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| · 酶联免疫吸附分析技术(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA) | 第44-45
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| · 分子生物学检测的辅助设备 | 第45
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| · 分子生物学检测技术的应用 | 第45-47
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| · 小结与展望 | 第47-48
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| 第二章 中国海域几株中肋骨条藻类似硅藻的形态及系统进化分析 | 第48-84
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| · 前言 | 第48-49
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| · 材料与方法 | 第49-60
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| · 实验藻种及培养条件 | 第49-51
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| · LM 观察 | 第51
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| · SEM 观察 | 第51
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| · 细胞测量学与数据统计 | 第51-52
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| · 细胞总DNA 的提取和质量检测 | 第52-53
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| · ITS (含5.8S rDNA) 和LSU D1-D2 rDNA 序列的PCR 扩增 | 第53
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| · 扩增DNA 的纯化回收 | 第53-54
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| · 扩增DNA 的T-A 克隆 | 第54-57
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| · 序列分析 | 第57-60
页 |
| · 结果 | 第60-76
页 |
| · 形态学观察结果 | 第60-70
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| · DNA 的分离 | 第70-71
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| · PCR 及测序 | 第71-72
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| · 系统发育分析 | 第72-73
页 |
| · 骨条藻间的遗传距离 | 第73-76
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| · 讨论 | 第76-84
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| · 骨条藻种的划分的形态学标准 | 第76-77
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| · 骨条藻种的鉴定及形态学比较 | 第77-79
页 |
| · 用ITS 和LSU D1-D2 rDNA 对骨条藻种的鉴定 | 第79-81
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| · 骨条藻的地理分布与进化关系 | 第81-82
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| · 骨条藻种的多样性 | 第82-84
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| 第三章 一株裸甲藻类似种的形态学观察及rDNA 和ITS 序列分析 | 第84-94
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| · 前言 | 第84-85
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| · 材料与方法 | 第85-86
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| · 实验藻种及培养条件 | 第85
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| · LM 观察 | 第85
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| · SEM 观察 | 第85
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| · 细胞总DNA 的提取和质量检测 | 第85
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| · ITS (含5.8S rDNA)和LSU D1-D2 rDNA 序列(以下简称LSU 序列) 的PCR 扩增 | 第85
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| · 扩增DNA 的纯化回收、克隆和测序 | 第85
页 |
| · 序列分析 | 第85-86
页 |
| · 结果 | 第86-92
页 |
| · 形态学观察结果 | 第86-89
页 |
| · DNA 的分离 | 第89
页 |
| · PCR 及测序 | 第89
页 |
| · 序列分析 | 第89-90
页 |
| · 系统树分析 | 第90-92
页 |
| · 讨论 | 第92-94
页 |
| 第四章 赤潮异湾藻的全细胞FISH 检测 | 第94-113
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| · 前言 | 第94-96
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| · 材料与方法 | 第96-101
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| · 实验藻种及培养条件 | 第96
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| · 细胞总DNA 的提取和质量检测 | 第96
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| · LSU 和ITS 序列的PCR 扩增 | 第96
页 |
| · 扩增DNA 的纯化回收、克隆与测序 | 第96
页 |
| · 序列分析 | 第96
页 |
| · 寡核甘酸探针的设计 | 第96-98
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| · 赤潮异湾藻的固定测试 | 第98-99
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| · 荧光原位杂交 | 第99-100
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| · 探针的交叉反应测试 | 第100
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| · 细胞周期内荧光信号和FISH 检测率的比较 | 第100-101
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| · 图像采集及分析 | 第101
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| · 数理统计方法 | 第101
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| · 结果与讨论 | 第101-113
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| · 杂交流程的建立和优化 | 第101-105
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| · 用优化的杂交流程对赤潮异湾藻进行特异性的检测 | 第105-108
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| · 赤潮异湾藻的不同生长阶段对FISH 检测的影响 | 第108-109
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| · 建立的FISH 与其它检测赤潮异湾藻的方法的比较 | 第109-111
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| · FISH 的应用前景 | 第111-113
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| 第五章 海洋原甲藻的全细胞FISH 检测 | 第113-121
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| · 前言 | 第113
页 |
| · 材料与方法 | 第113-117
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| · 实验藻种及培养条件 | 第113-114
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| · 细胞总DNA 的提取和质量检测 | 第114
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| · LSU D1-D2 rDNA 序列(以下简称LSU 序列)和ITS 序列(含ITS1、ITS2 和5.8S rDNA，以下同)的PCR 扩增 | 第114-115
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| · 扩增DNA 的纯化回收与测序 | 第115
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| · 序列分析 | 第115
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| · 寡核甘酸探针的设计 | 第115-116
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| · 全细胞荧光原位杂交 | 第116
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| · 探针的特异性测试 | 第116
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| · 图像采集及分析 | 第116-117
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| · 结果与讨论 | 第117-121
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| · 原位杂交方法 | 第117
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| · 探针的特异性 | 第117-121
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| 第六章 小结 | 第121-123
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| · 主要研究结果或结论 | 第121
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| · 研究的不足 | 第121-122
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| · 下一步需要做的工作 | 第122-123
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| 参考文献 | 第123-149
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| 在读博士期间论文发表情况 | 第149-151
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| 致谢 | 第151
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