论文目录 | |
| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 英文名称缩写 | 第7-11页 |
| 第一章 研究背景 | 第11-29页 |
| · 小鼠雌性生殖发育过程 | 第11-16页 |
| · 雌性生殖干细胞的研究背景 | 第16-17页 |
| · 干细胞 | 第17-28页 |
| · 细胞增殖的检测 | 第28-29页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第29-61页 |
| · 免疫荧光组织化学体内定位小鼠雌性生殖干细胞 | 第29-31页 |
| · 小鼠雌性生殖干细胞的饲养层的准备 | 第31-32页 |
| · 小鼠雌性生殖干细胞的体外分离和纯化 | 第32-34页 |
| · 小鼠雌性生殖干细胞的体外培养 | 第34页 |
| · 小鼠雌性生殖干细胞的冻存与解冻 | 第34-35页 |
| · 用RT-PCR 检测小鼠雌性生殖干细胞标志物基因的表达 | 第35-41页 |
| · 细胞免疫荧光化学 | 第41页 |
| · 细胞双标记免疫荧光 | 第41-42页 |
| · 小鼠雌性生殖干细胞的碱性磷酸酶活性检测 | 第42-43页 |
| · 小鼠雌性生殖干细胞的甲基化水平检测 | 第43-47页 |
| · 小鼠雌性生殖干细胞的核型分析 | 第47页 |
| · 小鼠雌性生殖干细胞的端粒酶活性检测 | 第47-48页 |
| · 小鼠雌性生殖干细胞的体内移植实验 | 第48-57页 |
| · 小鼠雌性生殖干细胞皮下移植实验 | 第57页 |
| · 小鼠卵巢内CD9，Stpb-c，Fragilis 的表达 | 第57-58页 |
| · BrdU/Stpb-c 和BrdU/Fragilis 双标记 | 第58页 |
| · 长期培养细胞的免疫荧光化学 | 第58-59页 |
| · 用Stpb-c 和Fragilis 分选小鼠雌性生殖干细胞 | 第59页 |
| · 统计分析磁珠分选结果 | 第59-61页 |
| 第三章 实验结果 | 第61-93页 |
| · 体内定位小鼠雌性生殖干细胞 | 第61-62页 |
| · 细胞分离结果 | 第62-68页 |
| · 细胞系功能鉴定 | 第68-82页 |
| · 找寻新的标志物提高细胞分离效率 | 第82-93页 |
| 第四章 结果讨论 | 第93-105页 |
| · 通过双标记免疫荧光组织化学和组织学在小鼠体内定位具有增殖能力的生殖细胞 | 第93-94页 |
| · 用双酶法与磁珠相结合的方法尝试分选细胞 | 第94-95页 |
| · 细胞体外培养 | 第95-96页 |
| · 小鼠雌性生殖干细胞的标志物表达特征 | 第96-97页 |
| · 小鼠雌性生殖干细胞的碱性磷酸酶活性 | 第97页 |
| · 小鼠雌性生殖干细胞的甲基化修饰 | 第97-98页 |
| · 不育小鼠模型的构建 | 第98-99页 |
| · 手术后小鼠生殖力的恢复情况 | 第99-101页 |
| · 磁珠分选细胞 | 第101-104页 |
| · MVH 和Fragilis 分离效率差异的分析讨论 | 第104-105页 |
| 第五章 全文总结 | 第105-107页 |
| · 主要结论 | 第105-106页 |
| · 研究展望 | 第106-107页 |
| 参考文献 | 第107-121页 |
| 附录Ⅰ实验仪器 | 第121-123页 |
| 附录Ⅱ材料与试剂 | 第123-128页 |
| 附录Ⅲ实验试剂的配制方法 | 第128-137页 |
| 附录IV 实验动物 | 第137-138页 |
| 致谢 | 第138-139页 |
| 攻读博士学位期间已发表或录用的论文 | 第139-140页 |
| 攻读博士学位期间参与的国家项目 | 第140-142
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