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夹脊电针拮抗ALS-SOD1G93A转基因小鼠腰髓神经元兴奋性毒性的机制研究

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夹脊电针拮抗ALS-SOD1G93A转基因小鼠腰髓神经元兴奋性毒性的机制研究
论文目录
 
缩略语表第1-8页
中文摘要第8-11页
ABSTRACT第11-14页
前言第14-16页
文献综述第16-34页
  1 现代医学对肌萎缩侧索硬化的研究概况第16-25页
    · ALS简介第16页
    · ALS诊断第16-18页
    · ALS病理过程中神经细胞死亡机制第18-25页
  2 中医学对肌萎缩侧索硬化的认识第25-34页
    · 肌萎缩侧索硬化的中医病名归属第25-26页
    · 肌萎缩侧索硬化的病因病机探究第26-30页
    · 方药治疗肌萎缩侧索硬化的概况第30-32页
    · 针灸推拿治疗肌萎缩侧索硬化的现状第32-34页
实验研究第34-64页
  第一部分 夹脊电针对ALS-SOD1~(G93A)转基因小鼠疾病进程和行为学的影响第34-45页
    1 实验材料第34-35页
      · 实验动物第34页
      · 实验仪器和设备第34页
      · 主要试剂第34-35页
      · 引物序列第35页
    2 实验方法第35-37页
      · ALS-SOD1~(G93A)转基因小鼠的鉴定第35页
      · 动物分组和处置方法第35-36页
      · ALS-SOD1~(G93A)转基因小鼠发病和疾病进展的评估第36-37页
    3 统计方法第37页
    4 结果第37-44页
      · ALS-SOD1~(G93A)转基因小鼠的鉴定第37-38页
      · ALS-SOD1~(G93A)转基因小鼠的表型特征第38-39页
      · 夹脊电针对ALS-SOD1~(G93A)转基因小鼠疾病进程和行为学的影响第39-44页
    5 小结第44-45页
  第二部分 夹脊电针拮抗ALS-SOD1~(G93A)转基因小鼠腰髓神经元兴奋性毒性的机制研究第45-64页
    1 实验材料第45-47页
      · 实验动物第45页
      · 实验仪器和设备第45-46页
      · 主要试剂第46-47页
    2 实验方法第47-53页
      · 动物分组和处置方法第47页
      · ELISA法检测血清中谷氨酸含量第47-48页
      · HE染色观察腰髓前角运动神经元形态及计数第48-49页
      · 电镜观察腰髓前角运动神经元超微结构变化第49-50页
      · 免疫组化法检测腰髓前角EAAT2、AMPA受体GluR2亚单位的表达第50-51页
      · Western blot检测腰髓EAAT2、AMPA受体GluR2亚单位的表达第51-53页
    3 统计方法第53-54页
    4 实验结果第54-62页
      · 各组小鼠腰髓前角HE染色观察结果第54-55页
      · 各组小鼠腰髓前角神经元超微结构观察结果第55-56页
      · 各组小鼠血清中谷氨酸含量第56-57页
      · 各组小鼠腰髓谷氨酸转运体EAAT2的表达第57-59页
      · 各组小鼠腰髓AMPA受体GluR2亚单位的表达第59-62页
    5 小结第62-64页
讨论第64-73页
  1 ALS实验模型的选择第64-66页
    · 体外培养模型第64页
    · 动物模型第64-66页
  2 针刺方案的选择第66-69页
    · 选穴方案的中医理论基础第66-67页
    · 腧穴的选择第67-68页
    · 电针频率的选择第68-69页
  3 研究结果及分析第69-72页
    · 谷氨酸与ALS第69页
    · 谷氨酸转运体EAAT2与ALS第69-70页
    · AMPA受体亚单位GluR2亚单位与ALS第70-72页
  4 不足和展望第72-73页
结论第73-74页
参考文献第74-90页
附录第90-95页
  附图1第90-91页
  附图2第91-93页
  附图3第93-94页
  附图4第94-95页
致谢第95-97页
个人简历第97页
攻读博士期间发表论文情况第97页

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