论文目录 | |
| 缩略语表 | 第1-9页 |
| 中文摘要 | 第9-14页 |
| 英文摘要 | 第14-20页 |
| 前言 | 第20-23页 |
| 文献回顾 | 第23-49页 |
| 一、肺损伤的病理生理研究进展 | 第23-31页 |
| 二、干细胞在肺再生中的应用研究进展 | 第31-38页 |
| 三、抗微生物多肽的应用研究进展 | 第38-49页 |
| 第一部分 肺成体干细胞对小鼠博莱霉素肺损伤的保护作用 | 第49-69页 |
| 1 材料 | 第49-52页 |
| 1.1 实验动物 | 第49-50页 |
| 1.2 主要试剂 | 第50-51页 |
| 1.3 使用仪器 | 第51-52页 |
| 1.4 主要试剂的配制 | 第52页 |
| 1.5 统计学分析 | 第52页 |
| 2 方法 | 第52-57页 |
| 2.1 mDASC的分离和培养 | 第52-53页 |
| 2.2 实验动物模型的建立和处理 | 第53页 |
| 2.3 肺组织湿/干重(W/D)比例测定 | 第53页 |
| 2.4 肺组织病理学检测 | 第53-55页 |
| 2.5 肺组织免疫荧光染色 | 第55页 |
| 2.6 肺组织羟脯胺酸含量检测 | 第55页 |
| 2.7 WesternBlotting | 第55-56页 |
| 2.8 动脉血气分析 | 第56-57页 |
| 2.9 生存分析 | 第57页 |
| 2.10 统计学分析 | 第57页 |
| 3 结果 | 第57-67页 |
| 3.1 BLM肺损伤后小鼠内源性mDASC的表达及特性 | 第57-58页 |
| 3.2 mDASC在小鼠BLM损伤肺组织中的定植和分化 | 第58-62页 |
| 3.3 mDASC对小鼠BLM性肺损伤的保护作用 | 第62-64页 |
| 3.4 mDASC可减少BLM损伤的肺组织中胶原的含量和α-SMA的表达 | 第64-66页 |
| 3.5 mDASC对 BLM性肺纤维化小鼠肺功能的保护作用 | 第66页 |
| 3.6 mDASC对 BLM性肺损伤小鼠生存率的影响 | 第66-67页 |
| 4 讨论 | 第67-69页 |
| 第二部分 LL37 的抗菌作用及其相关作用机制 | 第69-79页 |
| 1 材料 | 第69-71页 |
| 1.1 菌株及细胞 | 第69页 |
| 1.2 主要试剂 | 第69-70页 |
| 1.3 使用仪器 | 第70页 |
| 1.4 主要试剂的配制 | 第70-71页 |
| 1.5 统计学分析 | 第71页 |
| 2 方法 | 第71-73页 |
| 2.1 铜绿假单胞菌的培养和计数 | 第71页 |
| 2.2 LL-37 抗菌实验 | 第71页 |
| 2.3 细胞的培养 | 第71-72页 |
| 2.4 LPS对 NR8383 细胞炎性损伤模型 | 第72页 |
| 2.5 NR8383 细胞活性检测 | 第72页 |
| 2.6 NR8383 细胞凋亡检测 | 第72页 |
| 2.7 细胞炎性因子检测 | 第72-73页 |
| 2.8 WesternBlotting | 第73页 |
| 2.9 统计学分析 | 第73页 |
| 3 结果 | 第73-77页 |
| 3.1 LL-37对PAO1 的抗菌活性 | 第73-74页 |
| 3.2 LL37对LPS致 NR8383 细胞活性和凋亡的影响 | 第74-75页 |
| 3.3 LL37对LPS致 NR8383 细胞TNF-α和 IL-6 分泌水平的影响 | 第75-76页 |
| 3.4 LL37对LPS致 NR8383 细胞中P-NF-κΒp65 蛋白表达的影响 | 第76-77页 |
| 4 讨论 | 第77-79页 |
| 第三部分 表达LL37的mDASC对小鼠博莱霉素肺损伤及肺感染的保护作用 | 第79-100页 |
| 1 材料 | 第79-81页 |
| 1.1 实验动物及菌株 | 第79-80页 |
| 1.2 主要试剂 | 第80页 |
| 1.3 使用仪器 | 第80页 |
| 1.4 主要试剂的配制 | 第80页 |
| 1.5 统计学分析 | 第80-81页 |
| 2 方法 | 第81-85页 |
| 2.1 过表达LL37的mDASC的制备 | 第81-82页 |
| 2.2 实验动物模型的建立和处理 | 第82页 |
| 2.3 肺组织湿/干重(W/D)比例测定 | 第82页 |
| 2.4 小鼠肺泡灌洗的收集 | 第82页 |
| 2.5 肺组织病理学检测 | 第82-83页 |
| 2.6 肺组织免疫荧光染色 | 第83页 |
| 2.7 WesternBlotting | 第83页 |
| 2.8 实时荧光定量PCR | 第83页 |
| 2.9 LL37-mDASC的体外抗菌作用 | 第83-84页 |
| 2.10 LL37-mDASC体内抗菌作用 | 第84页 |
| 2.11 免疫组织化学染色 | 第84页 |
| 2.12 动脉血气分析 | 第84页 |
| 2.13 统计学分析 | 第84-85页 |
| 3 结果 | 第85-97页 |
| 3.1 BLM肺损伤对小鼠肺感染的影响 | 第85-86页 |
| 3.2 LL37 转染对mDASC的影响 | 第86-89页 |
| 3.3 LL37-mDASC体外抗菌作用 | 第89-92页 |
| 3.4 LL37-mDASC体内抗菌作用 | 第92-97页 |
| 3.5 LL37-mDASC对小鼠肺功能的保护作用 | 第97页 |
| 4 讨论 | 第97-100页 |
| 第四部分 过表达LL37的hDASC的抗菌作用 | 第100-109页 |
| 1 材料 | 第100-101页 |
| 1.1 实验动物及菌株 | 第100页 |
| 1.2 主要试剂 | 第100页 |
| 1.3 使用仪器 | 第100页 |
| 1.4 主要试剂的配制 | 第100-101页 |
| 1.5 统计学分析 | 第101页 |
| 2 方法 | 第101-102页 |
| 2.1 人源性DASC的分离和培养 | 第101页 |
| 2.2 大鼠肺脱细胞化和再细胞化 | 第101-102页 |
| 2.3 人源性DASC的体外抗菌作用 | 第102页 |
| 2.4 肺组织病理学检测 | 第102页 |
| 2.5 免疫荧光染色 | 第102页 |
| 2.6 实时荧光定量PCR | 第102页 |
| 2.7 统计学分析 | 第102页 |
| 3 结果 | 第102-107页 |
| 3.1 过表达LL37 人源性DASC的特性 | 第102-104页 |
| 3.2 大鼠肺的脱细胞和再细胞化 | 第104-105页 |
| 3.3 过表达LL37 人源性DASC的抗菌作用 | 第105-107页 |
| 4 讨论 | 第107-109页 |
| 小结 | 第109-110页 |
| 参考文献 | 第110-128页 |
| 个人简历和研究成果 | 第128-129页 |
| 致谢 | 第129页 |
