论文目录 | |
| 中文摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-12页 |
| 缩略语 | 第12-14页 |
| 前言 | 第14-19页 |
| 研究现状、成果 | 第14-17页 |
| 研究目的 | 第17页 |
| 研究方法 | 第17-19页 |
| 一、hUCMSCs外泌体的提取与鉴定 | 第19-35页 |
| 1.1 对象和方法 | 第19-22页 |
| 1.1.1 实验对象 | 第19页 |
| 1.1.2 实验材料及设备 | 第19-20页 |
| 1.1.3 实验方法 | 第20-22页 |
| 1.2 结果 | 第22-25页 |
| 1.2.1 hUCMSCs的形态学观察 | 第22-23页 |
| 1.2.2 hUCMSCs生长曲线的绘制 | 第23-24页 |
| 1.2.3 hUCMSCs外泌体的形态学观察 | 第24-25页 |
| 1.2.4 Western blot检测hUCMSCs外泌体的表面特异性蛋白 | 第25页 |
| 1.3 讨论 | 第25-34页 |
| 1.3.1 外泌体的生物学特性 | 第25-26页 |
| 1.3.2 外泌体与疾病诊断 | 第26-30页 |
| 1.3.3 外泌体与干细胞 | 第30-34页 |
| 1.4 小结 | 第34-35页 |
| 二、hUCMSCs外泌体对蓝光诱导ARPE-19 细胞VEGF-A表达的影响 | 第35-57页 |
| 2.1 对象和方法 | 第35-41页 |
| 2.1.1 实验对象 | 第35页 |
| 2.1.2 实验材料及设备 | 第35-36页 |
| 2.1.3 实验方法 | 第36-41页 |
| 2.2 结果 | 第41-48页 |
| 2.2.1 蓝光诱导损伤ARPE-19 细胞形态学变化 | 第41-43页 |
| 2.2.2 不同蓝光光照时间对ARPE-19 细胞增殖率的影响 | 第43页 |
| 2.2.3 不同蓝光照射时间ARPE-19 细胞VEGF-A蛋白的表达 | 第43-44页 |
| 2.2.4 不同蓝光光照时间ARPE-19 细胞VEGF-A RNA的表达 | 第44-45页 |
| 2.2.5 不同浓度hUCMSCs外泌体对于蓝光诱导损伤ARPE-19 细胞作用的形态学观察 | 第45页 |
| 2.2.6 不同浓度hUCMSCs外泌体对于蓝光诱导损伤ARPE-19 细胞VEGF-A蛋白表达影响 | 第45-46页 |
| 2.2.7 不同浓度hUCMSCs外泌体对于蓝光诱导损伤ARPE-19 细胞VEGF-ARNA表达影响 | 第46-47页 |
| 2.2.8 免疫荧光检测不同浓度hUCMSCs外泌体对于蓝光诱导损伤ARPE-19细胞VEGF-A表达影响 | 第47-48页 |
| 2.3 讨论 | 第48-56页 |
| 2.3.1 RPE、VEGF-A与AMD | 第48-50页 |
| 2.3.2 影响RPE及RPE/脉络膜分泌VEGF-A的转录因子 | 第50-51页 |
| 2.3.3 CD46与RPE分泌VEGF-A的调节关系 | 第51-52页 |
| 2.3.4 成年人RPE与VEGF | 第52-54页 |
| 2.3.5 光诱导视网膜损伤模型 | 第54-56页 |
| 2.4 小结 | 第56-57页 |
| 三、hUCMSCs外泌体对激光诱导BN大鼠脉络膜新生血管疗效的观察 | 第57-80页 |
| 3.1 对象和方法 | 第57-60页 |
| 3.1.1 实验对象 | 第57页 |
| 3.1.2 实验材料及设备 | 第57-60页 |
| 3.2 结果 | 第60-70页 |
| 3.2.1 大鼠脉络膜新生血管HE染色结果 | 第60-63页 |
| 3.2.2 荧光造影检测各组激光点渗漏率 | 第63-66页 |
| 3.2.3 免疫组化检测各实验组VEGF-A蛋白表达 | 第66-70页 |
| 3.3 讨论 | 第70-79页 |
| 3.3.1 CNV动物模型的建立 | 第70-77页 |
| 3.3.2 动物实验小结 | 第77-79页 |
| 3.4 小结 | 第79-80页 |
| 全文结论 | 第80-82页 |
| 论文创新点 | 第82-83页 |
| 参考文献 | 第83-107页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第107-108页 |
| 综述 年龄相关性黄斑变性中视网膜色素上皮损伤机制的研究进展 | 第108-119页 |
| 综述参考文献 | 第113-119页 |
| 致谢 | 第119-121页 |
| 个人简历 | 第121页 |
