论文目录 | |
| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-10页 |
| 第一章 前言 | 第10-38页 |
| 1. 褐藻 | 第10-20页 |
| 1.1. 褐藻简介 | 第10-12页 |
| 1.2. 褐藻胶 | 第12-13页 |
| 1.3. 褐藻糖胶 | 第13-20页 |
| 2. 糖尿病 | 第20-28页 |
| 2.1. 糖尿病概述 | 第20-21页 |
| 2.2. 糠尿病分类 | 第21-22页 |
| 2.3. 糖尿病的历史 | 第22页 |
| 2.4. 糖尿病并发症 | 第22-26页 |
| 2.5. 糖尿病的冶疗方法 | 第26-28页 |
| 3. 立题依据及研究思路 | 第28-29页 |
| 参考文献 | 第29-38页 |
| 第二章 糖类对脂类代谢的影响 | 第38-69页 |
| 1 引言 | 第38页 |
| 2 材料与方法 | 第38-49页 |
| 2.1 实验材料 | 第38-39页 |
| 2.2 试验方法 | 第39-49页 |
| 3 结果及讨论 | 第49-65页 |
| 3.1 不同种类海洋糖类影响HepG2细胞的脂质积累活性初步测定 | 第49-51页 |
| 3.2 SLMG的硫酸化相关检测 | 第51-53页 |
| 3.3 LMG及SLMG的HepG2细胞毒性检测 | 第53-54页 |
| 3.4 不同浓度LMG及SLMG对HepG2细胞的脂质积累的影响 | 第54-55页 |
| 3.5 LMG及SLMG抑制HMGCR酶活性 | 第55-57页 |
| 3.6 SLMG对载脂蛋白AI分泌的影响 | 第57-59页 |
| 3.7 SLMG对AMPK、HMGCR、ACC的磷酸化的影响 | 第59-61页 |
| 3.8 SLMG调节SREBP-1表达 | 第61-62页 |
| 3.9 SLMG调节SERBP-2及LDLR表达 | 第62-64页 |
| 3.10 SLMG调节CYP7A1表达 | 第64-65页 |
| 4 小结 | 第65-67页 |
| 参考文献 | 第67-69页 |
| 第三章 海洋糖类α-糖苷酶抑制剂筛选 | 第69-111页 |
| 1 引言 | 第69页 |
| 2 材料与方法 | 第69-79页 |
| 2.1 实验材料 | 第69-71页 |
| 2.2 实验方法 | 第71-79页 |
| 3 结果与讨论 | 第79-107页 |
| 3.1 不同种类海洋糖类α-糖苷酶抑制活性的初步测定 | 第79-86页 |
| 3.2 不同来源的褐藻糖胶的抑制活性 | 第86-90页 |
| 3.3 具有较好活性褐藻糖胶酶学参数测定 | 第90-95页 |
| 3.4 总酚含量测定 | 第95-96页 |
| 3.5 酸降解对活性的影响 | 第96-98页 |
| 3.6 蛋白对活性的影响 | 第98-99页 |
| 3.7 脱色对活性的影响 | 第99-102页 |
| 3.8 QFF分离组分活性测定 | 第102-104页 |
| 3.9 毒性研究 | 第104-105页 |
| 3.10 Db/db小鼠试验 | 第105-107页 |
| 4 小结 | 第107-109页 |
| 参考文献 | 第109-111页 |
| 第四章 海洋糖类对糖尿病肾病的影响 | 第111-131页 |
| 1. 引言 | 第111页 |
| 2. 材料与方法 | 第111-115页 |
| 2.1. 实验材料 | 第111-112页 |
| 2.2. 试验方法 | 第112-115页 |
| 3. 实验结果 | 第115-126页 |
| 3.1. 抑制HBZ-1增殖活性初筛 | 第115-116页 |
| 3.2. 细胞毒性测定 | 第116-118页 |
| 3.3. 对HBZY-1细胞α-SMA分泌的影响 | 第118-120页 |
| 3.4. 不同来源的褐藻糖胶活性测定 | 第120-121页 |
| 3.5. 细胞周期测定 | 第121-123页 |
| 3.6. 对基质金属蛋白酶抑制剂TIMP-1的合成的影响 | 第123-124页 |
| 3.7. 对TGF-β1及其受体TGF-β1R合成的影响 | 第124-126页 |
| 4. 小结 | 第126-128页 |
| 参考文献 | 第128-131页 |
| 结论 | 第131-133页 |
| 创新点 | 第133-134页 |
| 个人简介 | 第134页 |
| 学术成果 | 第134-136页 |
| 致谢 | 第136页 |
