论文目录 | |
| 中文摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-9页 |
| 第一章 绪论 | 第16-75页 |
| 1.1 引言 | 第16页 |
| 1.2 碳基量子点 | 第16-41页 |
| 1.2.1 碳基量子点的制备 | 第17-26页 |
| 1.2.1.1 电弧放电法 | 第18页 |
| 1.2.1.2 激光刻蚀法 | 第18-19页 |
| 1.2.1.3 化学氧化法 | 第19页 |
| 1.2.1.4 电化学氧化法 | 第19-20页 |
| 1.2.1.5 水热法 | 第20-21页 |
| 1.2.1.6 热解法 | 第21-24页 |
| 1.2.1.7 微波法 | 第24-25页 |
| 1.2.1.8 燃烧法 | 第25-26页 |
| 1.2.1.9 常用的碳基量子点合成方法的比较 | 第26页 |
| 1.2.2 碳基量子点的性质 | 第26-30页 |
| 1.2.2.1 光学性质 | 第26-29页 |
| 1.2.2.1.1 紫外吸收与光致发光 | 第26-27页 |
| 1.2.2.1.2 化学发光 | 第27-28页 |
| 1.2.2.1.3 电化学发光 | 第28页 |
| 1.2.2.1.4 上转换发光 | 第28-29页 |
| 1.2.2.1.5 光诱导电子转移 | 第29页 |
| 1.2.2.2 生物特性 | 第29-30页 |
| 1.2.3 碳基量子点的应用 | 第30-41页 |
| 1.2.3.1 生物传感 | 第30-36页 |
| 1.2.3.1.1 荧光传感器 | 第30-34页 |
| 1.2.3.1.2 电化学发光传感器 | 第34-36页 |
| 1.2.3.2 生物成像 | 第36-40页 |
| 1.2.3.2.1 细胞成像 | 第36-39页 |
| 1.2.3.2.2 活体成像 | 第39-40页 |
| 1.2.3.3 药物运输 | 第40-41页 |
| 1.2.4 展望 | 第41页 |
| 1.2.4.1 目前存在的难题 | 第41页 |
| 1.2.4.2 以后的发展方向 | 第41页 |
| 1.3 基于碳量子点的复合物 | 第41-58页 |
| 1.3.1 概述 | 第41页 |
| 1.3.2 基于碳量子点的复合物的制备方法 | 第41-49页 |
| 1.3.2.1 还原法 | 第41-43页 |
| 1.3.2.2 水热法 | 第43-45页 |
| 1.3.2.3 电化学方法 | 第45-46页 |
| 1.3.2.4 易位生长法 | 第46-48页 |
| 1.3.2.5 常用的碳量子点/纳米粒子复合物合成方法的比较 | 第48-49页 |
| 1.3.3 基于碳量子点/纳米粒子复合物的应用 | 第49-57页 |
| 1.3.3.1 生物传感器 | 第49-53页 |
| 1.3.3.1.1 电子传感器 | 第49页 |
| 1.3.3.1.2 电化学传感器 | 第49-50页 |
| 1.3.3.1.3 光学传感器 | 第50-53页 |
| 1.3.3.1.3.1 基于荧光的光学传感器 | 第51-52页 |
| 1.3.3.1.3.2 基于表面增强拉曼散射的光学传感器 | 第52-53页 |
| 1.3.3.1.3.3 基于比色的光学传感器 | 第53页 |
| 1.3.3.2 荧光成像 | 第53-54页 |
| 1.3.3.3 光热治疗 | 第54-55页 |
| 1.3.3.4 药物运载 | 第55-57页 |
| 1.3.3.5 多功能应用 | 第57页 |
| 1.3.4 存在的问题及展望 | 第57-58页 |
| 1.4 本文的立意及主要研究工作 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-75页 |
| 第二章 固相加热法制备氮掺杂富氧石墨烯量子点及与汞离子(Ⅱ)的传感作用 | 第75-101页 |
| 2.1 引言 | 第75-76页 |
| 2.2 实验 | 第76-77页 |
| 2.2.1 材料 | 第76页 |
| 2.2.2 N-OGQDs的制备 | 第76页 |
| 2.2.3 仪器和N-OGQDs表征 | 第76-77页 |
| 2.2.4 量子产率的测量 | 第77页 |
| 2.2.5 Hg~(2+)的荧光测定 | 第77页 |
| 2.2.6 实际样品中Hg~(2+)检测 | 第77页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第77-95页 |
| 2.3.1 N-OGQDs的合成 | 第77-78页 |
| 2.3.2 N-OGQDs的表征 | 第78-83页 |
| 2.3.3 N-OGQDs的光学性质 | 第83-84页 |
| 2.3.4 N-OGQDs的稳定性 | 第84-86页 |
| 2.3.5 pH对N-OGQDs光学特性的影响 | 第86-87页 |
| 2.3.6 Hg~(2+)猝灭N-OGQDs荧光的机理研究 | 第87-88页 |
| 2.3.7 Hg~(2+)检测条件的优化 | 第88-90页 |
| 2.3.8 基于N-OGQDs的传感检测Hg | 第90-92页 |
| 2.3.9 基于N-OGQDs的传感检测Hg~(2+)的选择性 | 第92-93页 |
| 2.3.10 实际样品中Hg~(2+)的测定 | 第93-95页 |
| 2.4 结论 | 第95页 |
| 参考文献 | 第95-101页 |
| 第三章 氮、磷共掺杂碳点的设计、制备及用于活细胞内外Fe~(3+)荧光成像分析 | 第101-123页 |
| 3.1 引言 | 第101-102页 |
| 3.2 实验部分 | 第102-104页 |
| 3.2.1 主要试剂和材料 | 第102页 |
| 3.2.2 主要仪器 | 第102页 |
| 3.2.3 N,P-CDs的制备 | 第102-103页 |
| 3.2.4 Fe~(3+)的检测 | 第103页 |
| 3.2.5 N,P-CDs的细胞毒性实验 | 第103页 |
| 3.2.6 活细胞荧光成像 | 第103-104页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第104-116页 |
| 3.3.1 N,P-CDs的合成及表征 | 第104-106页 |
| 3.3.2 N,P-CDs的光学性质与稳定性 | 第106-108页 |
| 3.3.3 Fe~(3+)对N,P-CDs荧光响应及机理研究 | 第108-110页 |
| 3.3.4 检测Fe~(3+)实验条件的优化 | 第110-112页 |
| 3.3.5 Fe~(3+)的检测 | 第112-113页 |
| 3.3.6 Fe~(3+)检测的选择性 | 第113-114页 |
| 3.3.7 血清中Fe~(3+)检测 | 第114-115页 |
| 3.3.8 细胞成像 | 第115-116页 |
| 3.3.8.1 N,P-CDs的细胞活性检测 | 第115页 |
| 3.3.8.2 基于N,P-CDs的荧光探针检测细胞中的Fe~(3+) | 第115-116页 |
| 3.4 结论 | 第116-117页 |
| 参考文献 | 第117-123页 |
| 第四章 基于富氮功能基荧光碳量子点、宽响应pH传感的设计及用于细胞内pH检测 | 第123-141页 |
| 4.1 引言 | 第123-124页 |
| 4.2 实验部分 | 第124-125页 |
| 4.2.1 主要仪器与试剂 | 第124页 |
| 4.2.2 N-CNs的制备 | 第124页 |
| 4.2.3 pH荧光检测 | 第124页 |
| 4.2.4 实际水样中的pH检测 | 第124-125页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第125-136页 |
| 4.3.1 N-CNs的合成及表征 | 第125-128页 |
| 4.3.2 N-CNs的光学性质与稳定性研究 | 第128-131页 |
| 4.3.3 N-CNs的光学pH依赖性 | 第131-134页 |
| 4.3.6 实际水样中的pH值检测 | 第134页 |
| 4.3.7 细胞活性与细胞成像 | 第134-136页 |
| 4.4 结论 | 第136页 |
| 参考文献 | 第136-141页 |
| 第五章 氮掺杂石墨烯量子点/银纳米复合物的制备及用于苯二酚同分异构体的识别 | 第141-169页 |
| 5.1 引言 | 第141-142页 |
| 5.2 实验部分 | 第142-143页 |
| 5.2.1 主要仪器与试剂 | 第142页 |
| 5.2.2 溶液的配制 | 第142-143页 |
| 5.2.3 N-GQDs的制备 | 第143页 |
| 5.2.4 N-GQDs/AgNPs的制备 | 第143页 |
| 5.2.5 CC,RC和HQ的检测 | 第143页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第143-163页 |
| 5.3.1 实验原理 | 第143页 |
| 5.3.2 N-GQDs/AgNPs合成条件的优化 | 第143-146页 |
| 5.3.2.1 V_(N-GQDs)/V_(Ag+)的优化 | 第144-145页 |
| 5.3.2.2 氢氧化钠浓度的优化 | 第145页 |
| 5.3.2.3 反应时间的优化 | 第145-146页 |
| 5.3.3 N-GQDs/AgNPs的表征 | 第146-154页 |
| 5.3.5 CC、RC和HQ识别的可行性分析 | 第154-157页 |
| 5.3.6 实验条件的优化 | 第157-160页 |
| 5.3.6.1 V_(Ag+)/V_(N-GQDs-AgNPs)的优化 | 第157-158页 |
| 5.3.6.2 pH值的优化 | 第158-159页 |
| 5.3.6.3 反应时间的优化 | 第159-160页 |
| 5.3.7 CC和HQ的测定 | 第160-163页 |
| 5.3.7.1 CC的测定 | 第160-161页 |
| 5.3.7.2 HQ的测定 | 第161-163页 |
| 5.3.8 干扰实验 | 第163页 |
| 5.4 结论 | 第163-164页 |
| 参考文献 | 第164-169页 |
| 第六章 氮掺杂石墨烯量子点/四氧化三铁纳米复合物的制备及用于苯二胺同分异构体识别 | 第169-199页 |
| 6.1 引言 | 第169-170页 |
| 6.2 实验部分 | 第170-173页 |
| 6.2.1 主要仪器与试剂 | 第170-171页 |
| 6.2.2 N-GQDs、S,N-CD和N,P-CD的合成 | 第171页 |
| 6.2.3 Fe_3O_4/N-GQDs、Fe_3O_4 NPs、Fe_3O_4/S,N-CDs和Fe_3O_4/N,P-CDs的合成 | 第171页 |
| 6.2.4 表征 | 第171-172页 |
| 6.2.5 Fe_3O_4/N-GQDs辣根过氧化酶活性实验 | 第172页 |
| 6.2.6 Fe_3O_4/N-GQDs催化稳-静态分析 | 第172页 |
| 6.2.7 OPD,MPD, PPD的比色测定 | 第172-173页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第173-193页 |
| 6.3.1 Fe_3O_4/N-GQDs的合成 | 第173-179页 |
| 6.3.2 Fe_3O_4/N-GQDs表征 | 第179-183页 |
| 6.3.3 Fe_3O_4/N-GQDs的辣根过氧化酶活性 | 第183-186页 |
| 6.3.4 OPD,MPD,PPD的识别 | 第186-189页 |
| 6.3.5 OPD、MPD及PPD的比色测定 | 第189-191页 |
| 6.3.6 OPD和PPD检测的选择性 | 第191-193页 |
| 6.4 结论 | 第193页 |
| 参考文献 | 第193-199页 |
| 第七章 氮掺杂石墨烯量子点/氧化亚铜纳米复合物的制备及用于化学发光检测过氧化氢和尿酸 | 第199-223页 |
| 7.1 引言 | 第199-200页 |
| 7.2 实验部分 | 第200-202页 |
| 7.2.1 主要仪器与试剂 | 第200页 |
| 7.2.2 N-GQDs的合成 | 第200-201页 |
| 7.2.3 Cu_2O/N-GQDs的合成 | 第201页 |
| 7.2.4 表征 | 第201页 |
| 7.2.5 Cu_2O/N-GQDs辣根过氧化酶活性实验 | 第201页 |
| 7.2.6 UA的化学发光检测 | 第201页 |
| 7.2.7 血清和尿样中UA的化学发光检测 | 第201-202页 |
| 7.3 结果与讨论 | 第202-217页 |
| 7.3.1 Cu_2O/N-GQDs的合成 | 第202页 |
| 7.3.2 Cu_2O/N-GQDs表征 | 第202-206页 |
| 7.3.3 Fe_3O_4/N-GQDs的辣根过氧化酶活性 | 第206-209页 |
| 7.3.4 基于Cu_2O/N-GQDs的化学发光探针检测H_2O_2 | 第209-217页 |
| 7.3.4.1 H_2O_2测定条件的优化 | 第209-213页 |
| 7.3.4.2 H_2O_2的测定 | 第213-214页 |
| 7.3.4.3 UA的测定 | 第214-215页 |
| 7.3.4.4 测定UA的特异性 | 第215-216页 |
| 7.3.4.5 实际样品中UA的测定 | 第216-217页 |
| 7.4 结论 | 第217页 |
| 参考文献 | 第217-223页 |
| 全文总结及展望 | 第223-224页 |
| 攻读博士学位期间已发表的论文 | 第224-226页 |
| 致谢 | 第226-227页 |
