论文目录 | |
| 英文缩略词 | 第1-8页 |
| 第一部分:PKCβ在肿瘤发生发展中的作用研究 | 第8-59页 |
| 中文摘要 | 第9-10页 |
| 英文摘要 | 第10-12页 |
| 前言 | 第12-14页 |
| 实验材料 | 第14-18页 |
| 实验方法 | 第18-27页 |
| 实验结果 | 第27-50页 |
| 一、PKCβ基因转入NIH-3T3细胞对其生物学特性的影响 | 第27-41页 |
| · 表达质粒构建、提取和酶切鉴定 | 第27-28页 |
| · Western blot法检测NIH-3T3细胞中PKCβ的表达 | 第28-30页 |
| · 转入PKCβ基因对NIH-3T3细胞形态的影响 | 第30页 |
| · 转入PKCβ基因对NIH-3T3细胞生长的影响 | 第30-31页 |
| · 转入PKCβ基因对NIH-3T3细胞软琼脂集落形成能力的影响 | 第31-32页 |
| · 转入PKCβ基因对NIH-3T3细胞周期的影响 | 第32-33页 |
| · 转入PKCβ基因对NIH-3T3细胞运动能力的影响 | 第33-34页 |
| · 转入PKCβ基因对NIH-3T3细胞粘附能力的影响 | 第34-35页 |
| · 转入PKCβ基因对NIH-3T3细胞侵袭能力的影响 | 第35-36页 |
| · 转入PKCβ基因对NIH-3T3细胞分泌MMPs能力的影响 | 第36-37页 |
| · NIH-3T3/PKCβⅠ和NIH-3T3/PKCβⅡ细胞的致瘤性实验 | 第37-38页 |
| · 转入PKCβ基因对NIH-3T3细胞PKCβ下游信号蛋白的影响 | 第38-41页 |
| 二、沉默K562细胞中的PKCβⅡ对其生物学特性的影响 | 第41-50页 |
| · 不同组织来源的肿瘤细胞株中PKCβ蛋白表达 | 第41-43页 |
| · 流式细胞术检测瞬时转染效率 | 第43-44页 |
| · miR RNAi表达载体对K562细胞PKC β Ⅱ抑制效率的测定 | 第44-45页 |
| · 稳定沉默PKCβⅡ的K562单克隆细胞株鉴定 | 第45-46页 |
| · 稳定沉默PKCβⅡ对K562细胞生长的影响 | 第46-47页 |
| · 稳定沉默PKCβⅡ对K562细胞软琼脂集落形成能力的影响 | 第47页 |
| · 稳定沉默PKCβⅡ对K562细胞周期分布的影响 | 第47-48页 |
| · 稳定沉默PKCβⅡ对K562细胞PKCβ下游蛋白表达的影响 | 第48-50页 |
| 讨论 | 第50-54页 |
| 结论 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-59页 |
| 第二部分:新型双吲哚马来酰亚胺衍生物WK234抗慢性髓细胞性白血病作用及机制研究 | 第59-90页 |
| 中文摘要 | 第60-61页 |
| 英文摘要 | 第61-63页 |
| 前言 | 第63-64页 |
| 实验材料 | 第64-65页 |
| 实验方法 | 第65-69页 |
| 实验结果 | 第69-81页 |
| · 双吲哚马来酰亚胺类衍生物对肿瘤细胞的生长抑制作用 | 第69-70页 |
| · WK234对K562细胞增殖作用的影响 | 第70页 |
| · WK234对K562细胞的生长抑制作用 | 第70-71页 |
| · WK234对K562细胞软琼脂集落形成能力的影响 | 第71-72页 |
| · 流式细胞术检测WK234对K562细胞周期和凋亡的影响 | 第72-74页 |
| · 不同浓度WK234作用48 h对K562细胞周期和凋亡的影响 | 第72-73页 |
| · 30μmol/L WK234作用不同时间对K562细胞周期和凋亡的影响 | 第73-74页 |
| · DAPI染色法检测WK234对K562细胞的诱导凋亡作用 | 第74-75页 |
| · AO/EB染色法检测WK234对K562细胞的诱导凋亡作用 | 第75页 |
| · WK234对K562细胞凋亡相关蛋白的影响 | 第75-77页 |
| · WK234对K562细胞PKCβ及下游信号通路的影响 | 第77-79页 |
| · WK234对PKC激酶的抑制作用 | 第79-81页 |
| 讨论 | 第81-84页 |
| 结论 | 第84-85页 |
| 参考文献 | 第85-90页 |
| 综述 | 第90-103页 |
| 参考文献 | 第99-103页 |
| 致谢 | 第103-105页 |
| 个人简历 | 第105-106页 |
