论文目录 | |
| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 缩略语及中英文对照 | 第7-12页 |
| 第一章 前言 | 第12-29页 |
| 1.1 圆叶葡萄 | 第12页 |
| 1.2 多酚类化合物 | 第12-18页 |
| 1.2.1 酚酸类 | 第13-14页 |
| 1.2.2 黄酮醇及黄烷-3-醇类 | 第14-15页 |
| 1.2.3 单宁类 | 第15-17页 |
| 1.2.4 花色素与花色糖苷类 | 第17页 |
| 1.2.5 芪类 | 第17-18页 |
| 1.3 葡萄多酚的功效 | 第18-21页 |
| 1.3.1 抗氧化功效 | 第18页 |
| 1.3.2 心脑血管保护作用 | 第18-19页 |
| 1.3.3 神经细胞的效应 | 第19页 |
| 1.3.4 对微生物的影响 | 第19-20页 |
| 1.3.5 抗纤维化 | 第20-21页 |
| 1.3.6 抗肿瘤、癌症 | 第21页 |
| 1.4 乳腺癌 | 第21-22页 |
| 1.4.1 乳腺癌 | 第21-22页 |
| 1.4.2 乳腺癌与炎症及血管紧张素转换酶(ACE) | 第22页 |
| 1.5 细胞周期与细胞凋亡 | 第22-24页 |
| 1.5.1 细胞周期 | 第22-24页 |
| 1.5.2 细胞凋亡 | 第24页 |
| 1.6 葡萄多酚与乳腺癌 | 第24-27页 |
| 1.6.1 白藜芦醇对癌细胞凋亡与细胞周期的功效 | 第24-25页 |
| 1.6.2 其他活性成分对癌细胞凋亡与细胞周期的功效 | 第25-26页 |
| 1.6.3 白藜芦醇对癌细胞转移的功效 | 第26页 |
| 1.6.4 其他成分对癌细胞转移的功效 | 第26-27页 |
| 1.6.5 活性成分对雌激素生成相关酶及雌激素受体的影响 | 第27页 |
| 1.7 研究的目的、意义及内容 | 第27-29页 |
| 1.7.1 研究的目的 | 第27-28页 |
| 1.7.2 研究的意义 | 第28页 |
| 1.7.3 研究的内容 | 第28-29页 |
| 第二章 葡萄皮渣酚类物质的提取、组分分离及特征分析 | 第29-42页 |
| 2.1 材料与主要仪器 | 第29页 |
| 2.1.1 材料与试剂 | 第29页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第29页 |
| 2.2 实验方法 | 第29-33页 |
| 2.2.1 样品处理 | 第29-30页 |
| 2.2.2 提取 | 第30页 |
| 2.2.3 组分分离 | 第30-31页 |
| 2.2.4 总酚测定 | 第31-32页 |
| 2.2.5 液相色谱-质谱联用技术的测定 | 第32-33页 |
| 2.2.6 数据分析 | 第33页 |
| 2.3 实验结果 | 第33-39页 |
| 2.3.1 总酚测定的标准曲线 | 第33页 |
| 2.3.2 两种葡萄皮渣提取物各组分的总酚含量 | 第33-34页 |
| 2.3.3 液相色谱-质谱联用分析的标准曲线 | 第34-35页 |
| 2.3.4 两种葡萄皮渣提取物各组分的酚类物质 | 第35-39页 |
| 2.4 讨论 | 第39-40页 |
| 2.5 本章小结 | 第40-42页 |
| 第三章 葡萄皮渣提取物组分对乳腺癌细胞活力的影响 | 第42-53页 |
| 3.1 材料与主要仪器 | 第42-43页 |
| 3.1.1 材料与试剂 | 第42页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第42-43页 |
| 3.2 实验方法 | 第43-45页 |
| 3.2.1 完全培养基以及冻存培养基的配制 | 第43页 |
| 3.2.2 细胞培养及传代 | 第43页 |
| 3.2.3 细胞计数和台盼蓝染色 | 第43-44页 |
| 3.2.4 细胞冻存 | 第44页 |
| 3.2.5 细胞复苏 | 第44页 |
| 3.2.6 细胞活力检测 | 第44页 |
| 3.2.7 数据分析 | 第44-45页 |
| 3.3 实验结果 | 第45-50页 |
| 3.3.1 经'Noble'皮渣提取物各组分处理后的细胞活力曲线 | 第45-46页 |
| 3.3.2 经'赤霞珠'皮渣提取物各组分处理后的细胞活力曲线 | 第46-48页 |
| 3.3.3 不同葡萄皮渣提取物各组分的半数抑制浓度 | 第48-50页 |
| 3.4 讨论 | 第50-52页 |
| 3.5 本章小结 | 第52-53页 |
| 第四章 'Noble'皮渣提取物组分对乳腺癌细胞周期及凋亡的影响 | 第53-72页 |
| 4.1 材料与主要仪器 | 第53-54页 |
| 4.1.1 材料与试剂 | 第53页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第53-54页 |
| 4.2 实验方法 | 第54-58页 |
| 4.2.1 药物浓度的选择 | 第54页 |
| 4.2.2 细胞培养 | 第54-55页 |
| 4.2.3 流式细胞技术检测细胞周期(PI染色) | 第55页 |
| 4.2.4 流式细胞计数检测细胞凋亡(Annexin V-FITC/PI双染色) | 第55-56页 |
| 4.2.5 细胞总蛋白的提取 | 第56页 |
| 4.2.6 细胞蛋白浓度测定 | 第56页 |
| 4.2.7 免疫印迹分析(Western Blot) | 第56-58页 |
| 4.2.8 数据分析 | 第58页 |
| 4.3 实验结果 | 第58-69页 |
| 4.3.1 实验浓度的选择 | 第58-61页 |
| 4.3.2 各组分对MDA-MB-231细胞周期的影响 | 第61-62页 |
| 4.3.3 各组分对MDA-MB-231细胞周期因子的影响 | 第62-63页 |
| 4.3.4 各组分对MDA-MB-231细胞凋亡的影响 | 第63-65页 |
| 4.3.5 各组分对MDA-MB-231细胞凋亡因子的影响 | 第65-66页 |
| 4.3.6 各组分对MCF-7细胞周期的影响 | 第66-67页 |
| 4.3.7 各组分对MCF-7细胞凋亡的影响 | 第67-69页 |
| 4.4 讨论 | 第69-71页 |
| 4.5 本章小结 | 第71-72页 |
| 第五章 'Noble'皮渣提取物组分对癌细胞侵袭、炎症及ACE活力的影响 | 第72-85页 |
| 5.1 材料与主要仪器 | 第72-73页 |
| 5.1.1 材料与试剂 | 第72页 |
| 5.1.2 实验仪器 | 第72-73页 |
| 5.2 实验方法 | 第73-75页 |
| 5.2.1 细胞培养 | 第73页 |
| 5.2.2 细胞侵袭实验 | 第73页 |
| 5.2.3 结晶紫染色检测 | 第73-74页 |
| 5.2.4 细胞抑制率的检测 | 第74页 |
| 5.2.5 巨噬细胞炎症模型的建立 | 第74页 |
| 5.2.6 一氧化氮(NO)分泌量的检测 | 第74页 |
| 5.2.7 白细胞介素-6(IL-6)及肿瘤坏死因子-α(TNF-α)分泌量的检测 | 第74-75页 |
| 5.2.8 体外血管紧张素转换酶(ACE)活力的抑制 | 第75页 |
| 5.2.9 数据分析 | 第75页 |
| 5.3 实验结果 | 第75-83页 |
| 5.3.1 各组分对乳腺癌细胞侵袭的影响 | 第75-79页 |
| 5.3.2 各组分对炎症及ACE活性的影响 | 第79-83页 |
| 5.4 讨论 | 第83-84页 |
| 5.5 本章小结 | 第84-85页 |
| 第六章 总结与展望 | 第85-87页 |
| 6.1 全文总结 | 第85页 |
| 6.2 创新点 | 第85-86页 |
| 6.3 展望 | 第86-87页 |
| 参考文献 | 第87-102页 |
| 致谢 | 第102-103页 |
| 作者简介 | 第103页 |
