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高分子复合材料作为高效、安全的基因载体的研究

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高分子复合材料作为高效、安全的基因载体的研究
论文目录
 
内容摘要第6-8页
ABSTRACT第8-13页
第一章 绪论第13-29页
  1.1 基因治疗第13-15页
    1.1.1 基因治疗的历史与现状分析第13-14页
    1.1.2 基因转染第14-15页
  1.2 病毒载体与非病毒载体第15-17页
    1.2.1 病毒载体系统第15-16页
    1.2.2 非病毒载体系统第16-17页
  1.3 阳离子高分子基因转染载体第17-22页
    1.3.1 常见的阳离子高分子载体第17-18页
    1.3.2 阳离子高分子载体的优势第18-20页
    1.3.3 阳离子高分子作为基因转染载体存在的问题第20-22页
  1.4 联合使用多种高分子构建超分子体系第22-26页
    1.4.1 联合使用多种高分子构建超分子体系的重要性第22-23页
    1.4.2 超分子体系与生物材料第23-24页
    1.4.3 超分子体系与基因递送第24-26页
      1.4.3.1 利用氢键相互作用自组装成超分子基因载体第24页
      1.4.3.2 利用主客体自组装成超分子基因载体第24-25页
      1.4.3.3 利用疏水相互作用自组装成超分子基因递送载体第25-26页
      1.4.3.4 利用静电相互作用自组装成超分子基因递送载体第26页
  1.5 本文研究思路与内容第26-29页
第二章 一种新型的core-shell结构高分子复合物用于高效、低毒的基因转染第29-51页
  2.1 引言第29-30页
  2.2 实验部分第30-36页
    2.2.1 实验材料第30-31页
    2.2.2 core-shell复合物的合成第31页
    2.2.3 合成荧光标记的G8-RBITC和LPEI-FITC第31-32页
    2.2.4 荧光分光光度法与紫外分光光度法的表征实验第32页
    2.2.5 复合物的粒径和表面电势测量第32-33页
    2.2.6 透射电镜(TEM)样品的制备第33页
    2.2.7 细胞培养与基因转染第33-34页
    2.2.8 琼脂糖凝胶电泳第34页
    2.2.9 细胞毒性检测第34-35页
    2.2.10 细胞摄入第35页
    2.2.11 core-shell复合物的质子缓冲能力第35-36页
    2.2.12 共聚焦显微镜观察细胞摄入以及复合物共定位研究第36页
  2.3 实验结果与数据分析第36-50页
    2.3.1 筛选core-shell复合物最佳组分和最佳氮磷比第36-41页
    2.3.2 core-shell复合物的细胞毒性第41-42页
    2.3.3 转染机制研究第42-50页
      2.3.3.1 复合物的表征第42-45页
      2.3.3.2 细胞摄入第45-46页
      2.3.3.3 质子缓冲能力第46页
      2.3.3.4 转染复合物对核酸的结合能力第46-47页
      2.3.3.5 转染复合物对核酸的释放能力第47-50页
  2.4 本章小结第50-51页
第三章 G2 PAMAM与富勒烯C60的交联产物作为高效、低毒的基因递送载体第51-63页
  3.1 引言第51-52页
  3.2 实验部分第52-55页
    3.2.1 实验材料第52-53页
    3.2.2 G2 PAMAM与富勒烯C60交联复合物的合成第53页
    3.2.3 反应产物的组分比例分析第53-54页
    3.2.4 转染复合物的制备第54页
    3.2.5 交联产物以及产物与DNA形成的转染复合物的粒径和表面电势测量第54页
    3.2.6 透射电镜样品的制备第54页
    3.2.7 细胞培养与基因转染第54-55页
    3.2.8 琼脂糖凝胶电泳第55页
    3.2.9 细胞毒性检测第55页
    3.2.10 细胞摄入第55页
  3.3 实验结果与数据分析第55-62页
    3.3.1 交联产物的组分比例分析第55-56页
    3.3.2 交联产物的基因转染效果第56-58页
    3.3.3 交联产物的细胞毒性分析第58页
    3.3.4 转染机制分析第58-62页
      3.3.4.1 复合物的表征第58-61页
      3.3.4.2 转染复合物对核酸的结合能力第61页
      3.3.4.3 细胞摄入第61-62页
  3.4 本章小结第62-63页
第四章 结论与展望第63-65页
参考文献第65-77页
致谢第77页

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