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口蹄疫病毒非结构蛋白2B、3A对细胞凋亡的影响及干扰3D基因对病毒抑制的观察

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口蹄疫病毒非结构蛋白2B、3A对细胞凋亡的影响及干扰3D基因对病毒抑制的观察
论文目录
 
摘要第1-7页
Abstract第7-12页
英文缩略表第12-13页
引言第13-14页
第一章 文献综述第14-22页
  口蹄疫病毒分子生物学的研究进展第14-21页
    1 口蹄疫病毒的流行特点第14-15页
    2 口蹄疫病的疫苗研究第15-17页
    3 口蹄疫病毒的分子生物学特征第17-18页
    4 口蹄疫病毒基因组结构第18-21页
  研究目的及意义第21-22页
第二章 试验研究第22-52页
  试验一 口蹄疫病毒 2B、3A基因真核表达载体的构建及表达第22-32页
    摘要第22页
    ·材料第22-23页
      · 毒株和质粒第22页
      · 主要试剂第22-23页
      · 仪器第23页
    2 方法第23-27页
      · 引物的合成第23页
      · 模板的制备第23页
      · 目的基因的PCR的扩增第23-24页
      · 目的片段的回收第24页
      · p MD-19-T-2B、p MD-19-T-3A重组质粒的构建第24页
      · 转化连接产物第24-25页
      · 重组质粒p MD-19-T-2B、p MD-19-T-3A的菌液PCR以及双酶切鉴定第25页
      · p MD-19-T-2B、p MD-19-T-3A质粒的PCR及双酶切验证第25页
      · p EGFP-N1-3A、p EGFP-N1-2B真核重组质粒的构建过程第25-26页
      · p EGFP-N1-3A、p EGFP-N1-2B的PCR验证及质粒双酶切鉴定第26页
      · 大提质粒第26页
      · 培养BHK细胞第26页
      · 重组质粒转染BHK细胞第26页
      · 细胞转染的具体过程第26-27页
    3 结果与分析第27-30页
      · 目的基因 3A、2B的扩增第27页
      · p MD-18-T-3A、p MD-18-T-2B基因的PCR及双酶切验证第27-28页
      · PCR及双酶切鉴定第28-29页
      · 高纯度大提质粒浓度的测定结果第29页
      · BHK细胞转染结果第29-30页
    4 讨论第30-31页
    5 小结第31-32页
  试验二 3A-EGFP、2B-EGFP融合蛋白在BHK细胞中对细胞凋亡的影响以及表达分析第32-38页
    摘要第32-33页
    1 材料第33页
      · 菌种和细胞第33页
      · 重要试剂第33页
      · 实验仪器第33页
    2 方法第33-35页
      · BHK细胞转染过程第33页
      · BHK细胞转染后蛋白样品制备第33页
      · SDS-PAGE和Western blot常用试剂的配置第33-34页
      · SDS-PAG分离胶和浓缩胶的配置第34页
      · 融合蛋白 3A-EGFP、2B-EGFP的印记分析第34页
      · 2B-p EGFP 、3A-p EGFP诱导BHK细胞凋亡率第34-35页
    3 结果与分析第35-37页
      · 细胞克隆的非结构蛋白 3A、2B的表达分析第35页
      · 3A-p EGFP、2B- p EGFP和p EGFP-N1 诱导BHK细胞凋亡率第35-37页
    4 讨论第37页
    5 小结第37-38页
  试验三 细胞水平评价抗口蹄疫病毒转基因猪的抗病毒效果第38-52页
    摘要第38-39页
    1 材料和方法第39-45页
      · 材料第39页
        · 实验材料第39页
        · 主要生物试剂第39页
        · 主要仪器第39页
      · 方法第39-40页
        · 采样第39页
        · 组织基因组DNA的提取第39-40页
      · 目的基因的扩增第40-41页
        · 引物的合成第40页
        · PCR的扩增第40页
        · 目的基因的回收第40页
        · 回收的目的片段与p MD18-T simple载体连接第40-41页
      · 转化连接产物第41页
        · 转化第41页
        · 菌液PCR鉴定重组质粒第41页
        · 提取重组质粒第41页
      · 标准曲线的建立第41-42页
        · 引物设计及合成第41页
        · RNA的提取第41-42页
        · 3D基因部分片段的扩增第42页
      · 重组质粒制备第42页
        · PCR产物与载体连接、转化第42页
        · 质粒的提取和鉴定第42页
        · 质粒的定量第42页
      · 荧光定量PCR方法的建立第42-43页
        · 引物浓度的优化第42页
        · 循环条件的优化第42页
        · 荧光定量PCR标准曲线的建立第42-43页
        · 荧光定量PCR的敏感性检测第43页
        · 荧光定量PCR的重复性检测第43页
        · 荧光定量PCR的特异性试验第43页
      · 临床样品检测第43-45页
        · 转基因猪和正常猪成纤维细胞的分离第43页
        · TCID50的测定第43-44页
        · TCID50检测转基因猪成纤维细胞的抗病毒效果第44页
        · 攻毒细胞RNA提取及RT-PCR第44页
        · RNA纯度的检测第44页
        · RNA反转录第44-45页
      · 实时定量第45页
    2 结果与分析第45-50页
      · 转基因猪PCR的验证第45-46页
      · 转基因基因序列比对第46页
      · 病毒RNA的提取和目的基因片段的扩增第46-47页
      · 标准模板的鉴定第47页
      · 荧光定量PCR方法的建立第47页
        · 引物浓度的优化第47页
        · 循环条件的优化第47页
        · 荧光定量PCR反应条件第47页
      · 标准曲线方法的建立和直线回归方程的确立第47-48页
      · 敏感性和重复性分析第48-49页
      · 荧光定量PCR的特异性试验第49-50页
      · 临床样品的检测第50页
    3 讨论第50-51页
    4 小结第51-52页
全文总结第52-53页
创新点第53-54页
参考文献第54-59页
致谢第59-60页
作者简介第60-61页
附件第61页

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