论文目录 | |
| 摘要 | 第1-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 第一章 绪论 | 第10-23页 |
| 1.1 树突状细胞的概述 | 第10-14页 |
| 1.1.1 DC的起源 | 第10-11页 |
| 1.1.2 DC的分类 | 第11-12页 |
| 1.1.3 DC的功能 | 第12-14页 |
| 1.2 树突状细胞免疫学研究进展 | 第14-19页 |
| 1.2.1 DC在猪繁殖与呼吸综合症病毒感染中发挥的作用 | 第14-16页 |
| 1.2.2 DC在猪瘟病毒感染中发挥的作用 | 第16-17页 |
| 1.2.3 DC在猪流感病毒感染中发挥的作用 | 第17页 |
| 1.2.4 小结 | 第17-19页 |
| 1.3 水泡性口炎及水泡性口炎病毒 | 第19-21页 |
| 1.3.1 概述 | 第19-21页 |
| 1.3.2 VSV的研究进展 | 第21页 |
| 1.4 研究目的与意义 | 第21-23页 |
| 第二章 猪MONOCYTES及 MODC的培养及鉴定 | 第23-29页 |
| 2.1 仪器设备、材料与试剂 | 第23-24页 |
| 2.1.1 仪器及设备 | 第23页 |
| 2.1.2 试剂 | 第23-24页 |
| 2.1.3 材料 | 第24页 |
| 2.2 方法 | 第24-25页 |
| 2.2.1 取血 | 第24页 |
| 2.2.2 分离单核细胞 | 第24-25页 |
| 2.2.3 诱导MoDC | 第25页 |
| 2.2.4 MoDC的培养与观察形态 | 第25页 |
| 2.2.5 MoDC及单核细胞成熟度的鉴定 | 第25页 |
| 2.3 结果 | 第25-27页 |
| 2.4 讨论 | 第27-28页 |
| 2.5 本章小结 | 第28-29页 |
| 第三章 VSV及其M蛋白突变体刺激对DC表型的影响 | 第29-58页 |
| 3.1 仪器设备、材料与试剂 | 第29-32页 |
| 3.1.1 仪器与设备 | 第29-30页 |
| 3.1.2 试剂 | 第30页 |
| 3.1.3 主要试剂制备 | 第30-31页 |
| 3.1.4 材料 | 第31-32页 |
| 3.2 实验方法 | 第32-36页 |
| 3.2.1 VSV_(XN2)、VSV_(△M51)、VSV_(MT)培养及处理 | 第32-33页 |
| 3.2.2 VSV_(XN2)、VSV_(△M51)、VSV_(MT)的滴度测定 | 第33页 |
| 3.2.3 VSV及其M蛋白突变体在单核细胞及MoDC中的多步生长曲线 | 第33页 |
| 3.2.4 VSV及其M蛋白突变体诱导MoDC凋亡的流式细胞术检测 | 第33-34页 |
| 3.2.5 VSV及其M蛋白突变体诱导MoDC凋亡的Western Blot检测 | 第34-35页 |
| 3.2.6 MoDC表面抗原递呈分子及共刺激分子的检测 | 第35页 |
| 3.2.7 VSV及其M蛋白突变体诱导细胞因子表达量的检测 | 第35-36页 |
| 3.3 结果 | 第36-54页 |
| 3.4 讨论 | 第54-56页 |
| 3.5 本章小结 | 第56-58页 |
| 第四章 结论与展望 | 第58-61页 |
| 4.1 主要结论 | 第58-59页 |
| 4.2 展望 | 第59-61页 |
| 4.2.1 探究VSV_(XN2)选择性下调DC表面分子CD80/86的机制 | 第59-60页 |
| 4.2.2 探寻与M蛋白互作的候选蛋白 | 第60-61页 |
| 附录1 | 第61-64页 |
| 参考文献 | 第64-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
| 攻读硕士学位期间已发表或录用的论文 | 第70-72 |
