论文目录 | |
| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-9页 |
| 第一章 绪论 | 第9-17页 |
| · 研究背景 | 第9-15页 |
| · 心力衰竭定义 | 第9页 |
| · 心力衰竭的细胞和分子机制 | 第9-12页 |
| · 抗心力衰竭药物研究 | 第12-14页 |
| · 新型小分子AF-HF001的发现 | 第14-15页 |
| · 研究意义 | 第15-16页 |
| · 研究内容 | 第16-17页 |
| 第二章 AF-HF001抑制氧化应激诱导的心肌细胞凋亡 | 第17-28页 |
| · 引言 | 第17页 |
| · 实验材料 | 第17-18页 |
| · 细胞 | 第17页 |
| · 材料与试剂 | 第17-18页 |
| · 实验仪器 | 第18页 |
| · 实验方法 | 第18-20页 |
| · 细胞培养 | 第18页 |
| · 聚丙烯酰胺凝胶（SDS-PAGE）制备及免疫印迹（Western blot） | 第18-19页 |
| · 细胞凋亡ELISA检测 | 第19页 |
| · RNA提取 | 第19页 |
| · RNA完整性鉴定 | 第19-20页 |
| · mRNA芯片实验 | 第20页 |
| · 统计学分析 | 第20页 |
| · 实验结果 | 第20-26页 |
| · AF-HF001对正常心肌细胞的影响 | 第20-21页 |
| · AF-HF001对双氧水诱导心肌细胞凋亡的改善情况 | 第21页 |
| · AF-HF001对氯化钴诱导心肌细胞凋亡的改善情况 | 第21-22页 |
| · mRNA基因芯片筛选 | 第22-23页 |
| · AF-HF001与基因表达变化 | 第23-26页 |
| · 小结与讨论 | 第26-28页 |
| 第三章 AF-HF001抑制心肌细胞凋亡机制初步研究 | 第28-39页 |
| · 引言 | 第28-29页 |
| · 实验材料 | 第29-30页 |
| · 细胞 | 第29页 |
| · 材料与试剂 | 第29-30页 |
| · 实验仪器 | 第30页 |
| · 实验方法 | 第30-32页 |
| · 细胞培养 | 第30页 |
| · 聚丙烯酰胺凝胶制备及免疫印迹 | 第30页 |
| · 细胞凋亡ELISA检测 | 第30-31页 |
| · 活性氧测定 | 第31页 |
| · RNA提取 | 第31页 |
| · RNA完整性鉴定 | 第31页 |
| · RNA逆转录 | 第31页 |
| · 实时定量（Real-time Quantitative）-PCR | 第31页 |
| · 细胞转染 | 第31-32页 |
| ·统计学分析 | 第32页 |
| · 实验结论 | 第32-37页 |
| · AF-HF001减少胞内ROS产生 | 第32页 |
| · 双氧水参与调控H9c2细胞的MAPK通路 | 第32-33页 |
| · AF-HF001参与调控H9c2细胞的MAPK通路 | 第33页 |
| · MAPK通路与凋亡相关性 | 第33-34页 |
| · 双氧水诱导凋亡模型中MDSP高表达 | 第34页 |
| · AF-HF001抑制双氧水刺激下的MDSP高表达 | 第34-35页 |
| · MAPK家族JNK的活化与MDSP表达相关性 | 第35-36页 |
| · 高表达MDSP诱导H9c2细胞的凋亡 | 第36页 |
| · 基因沉默MDSP抑制H9c2细胞的凋亡 | 第36-37页 |
| · 小结与讨论 | 第37-39页 |
| 主要结论与展望 | 第39-40页 |
| 主要结论 | 第39页 |
| 展望 | 第39-40页 |
| 致谢 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-46页 |
| 附录 | 第46-47页 |
| 附录 1: 作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第46页 |
| 附录 2: 主要缩略词 | 第46-47页 |
