论文目录 | |
中文摘要 | 第1-10
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ABSTRACT | 第10-13
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第一章 前言 | 第13-20
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1.1 药物代谢 | 第13
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1.2 药物代谢研究方法 | 第13-14
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1.2.1 体内研究方法 | 第13-14
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1.2.2 体外研究方法 | 第14
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1.3 用微生物模型模拟哺乳动物药物代谢 | 第14-16
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1.4 药物代谢与细胞色素P450 | 第16-18
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1.4.1 药物代谢酶细胞色素P450简介 | 第16
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1.4.2 参与药物代谢的细胞色素P450酶的研究方法 | 第16-17
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1.4.3 真菌细胞色素P450 | 第17-18
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1.5 建立具有人体CYP2C9活性的微生物模型的意义及研究现状 | 第18-20
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1.5.1 初步建立具有人体CYP2C9活性的微生物模型 | 第18
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1.5.2 验证初选具有CYP2C9活性的微生物模型的适用性 | 第18-19
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1.5.3 检测人体CYP2C9化学抑制剂对模型菌株转化特异性底物甲苯磺丁脲的抑制 | 第19-20
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第二章 实验材料与基本方法 | 第20-23
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2.1 微生物 | 第20
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2.2 培养基 | 第20
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2.3 药品与试剂 | 第20-21
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2.4 仪器设备 | 第21
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2.5 微生物转化系统 | 第21-22
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2.5.1 转化菌株孢子和种子的制备 | 第21-22
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2.5.2 基本转化体系 | 第22
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2.5.3 放大制备转化系统 | 第22
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2.6 样品预处理和代谢产物检测 | 第22-23
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第三章 筛选具有人体CYP2C9活性的微生物模型 | 第23-33
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3.1 甲苯磺丁脲 | 第23-24
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3.2 甲苯磺丁脲的微生物转化方法 | 第24-25
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3.2.1 甲苯磺丁脲非静息和静息转化系统 | 第24
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3.2.2 甲苯磺丁脲转化产物的分析 | 第24
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3.2.3 静息转化系统同非静息转化系统相比较进行菌种筛选 | 第24-25
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3.2.4 代谢产物的分离与鉴定 | 第25
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3.3 微生物转化甲苯磺丁脲结果 | 第25-31
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3.3.1 甲苯磺丁脲的HPLC分析 | 第25-26
页 |
3.3.2 菌种筛选结果 | 第26-29
页 |
3.3.3 代谢产物的分离与鉴定 | 第29-31
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3.4 讨论 | 第31-33
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第四章 验证初选模型的应用性研究 | 第33-45
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4.1 吲哚美辛、格列本脲和双氯酚酸 | 第33-34
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4.2 吲哚美辛、格列本脲和双氯酚酸的微生物转化条件的考察 | 第34-35
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4.2.1 吲哚美辛和格列本脲转化产物的检测 | 第34-35
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4.2.1.1 吲哚美辛样品预处理 | 第34
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4.2.1.2 格列本脲样品预处理 | 第34-35
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4.2.1.3 双氯酚酸样品预处理 | 第35
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4.2.1.4 质谱条件均相同 | 第35
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4.2.2 转化菌种、最优pH及最佳底物浓度的确立 | 第35
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4.3 实验结果 | 第35-43
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4.3.1 吲哚美辛、格列本脲和双氯酚酸转化产物的检测 | 第35-40
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4.3.1.1 吲哚美辛转化产物的检测 | 第35-37
页 |
4.3.1.2 格列本脲转化产物的检测 | 第37-39
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4.3.1.3 双氯酚酸转化产物的检测 | 第39-40
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4.3.2 最优转化条件的建立结果 | 第40-42
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4.3.3 比较微生物转化产物同人体CYP2C9代谢产物的异同 | 第42-43
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4.3.4 确立最佳模型菌种 | 第43
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4.4 讨论 | 第43-45
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第五章 人体CYP2C9化学抑制剂对短刺小克银汉霉AS3.910药物代谢酶的抑制 | 第45-57
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5.1 丙戊酸、磺胺苯吡唑和苯溴马隆 | 第45-47
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5.2 实验方法 | 第47-48
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5.2.1 转化方法 | 第47-48
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5.2.2 转化样品的检测 | 第48
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5.3 结果 | 第48-56
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5.3.1 转化样品的检测结果 | 第48-50
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5.3.2 丙戊酸对甲苯磺丁脲4′-羟化的抑制 | 第50-51
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5.3.3 磺胺苯吡唑对甲苯磺丁脲4′-羟化的抑制 | 第51-53
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5.3.4 苯溴马隆对甲苯磺丁脲4′-羟化的抑制 | 第53-56
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5.4 讨论 | 第56-57
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第六章 结论 | 第57-59
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参考文献 | 第59-65
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致谢 | 第65-66
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作者简历 | 第66
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发表论文 | 第66
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