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建立具有药物代谢酶CYP2C9活性的微生物模型

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建立具有药物代谢酶CYP2C9活性的微生物模型
论文目录
 
中文摘要第1-10 页
ABSTRACT第10-13 页
第一章 前言第13-20 页
  1.1 药物代谢第13 页
  1.2 药物代谢研究方法第13-14 页
    1.2.1 体内研究方法第13-14 页
    1.2.2 体外研究方法第14 页
  1.3 用微生物模型模拟哺乳动物药物代谢第14-16 页
  1.4 药物代谢与细胞色素P450第16-18 页
    1.4.1 药物代谢酶细胞色素P450简介第16 页
    1.4.2 参与药物代谢的细胞色素P450酶的研究方法第16-17 页
    1.4.3 真菌细胞色素P450第17-18 页
  1.5 建立具有人体CYP2C9活性的微生物模型的意义及研究现状第18-20 页
    1.5.1 初步建立具有人体CYP2C9活性的微生物模型第18 页
    1.5.2 验证初选具有CYP2C9活性的微生物模型的适用性第18-19 页
    1.5.3 检测人体CYP2C9化学抑制剂对模型菌株转化特异性底物甲苯磺丁脲的抑制第19-20 页
第二章 实验材料与基本方法第20-23 页
  2.1 微生物第20 页
  2.2 培养基第20 页
  2.3 药品与试剂第20-21 页
  2.4 仪器设备第21 页
  2.5 微生物转化系统第21-22 页
    2.5.1 转化菌株孢子和种子的制备第21-22 页
    2.5.2 基本转化体系第22 页
    2.5.3 放大制备转化系统第22 页
  2.6 样品预处理和代谢产物检测第22-23 页
第三章 筛选具有人体CYP2C9活性的微生物模型第23-33 页
  3.1 甲苯磺丁脲第23-24 页
  3.2 甲苯磺丁脲的微生物转化方法第24-25 页
    3.2.1 甲苯磺丁脲非静息和静息转化系统第24 页
    3.2.2 甲苯磺丁脲转化产物的分析第24 页
    3.2.3 静息转化系统同非静息转化系统相比较进行菌种筛选第24-25 页
    3.2.4 代谢产物的分离与鉴定第25 页
  3.3 微生物转化甲苯磺丁脲结果第25-31 页
    3.3.1 甲苯磺丁脲的HPLC分析第25-26 页
    3.3.2 菌种筛选结果第26-29 页
    3.3.3 代谢产物的分离与鉴定第29-31 页
  3.4 讨论第31-33 页
第四章 验证初选模型的应用性研究第33-45 页
  4.1 吲哚美辛、格列本脲和双氯酚酸第33-34 页
  4.2 吲哚美辛、格列本脲和双氯酚酸的微生物转化条件的考察第34-35 页
    4.2.1 吲哚美辛和格列本脲转化产物的检测第34-35 页
      4.2.1.1 吲哚美辛样品预处理第34 页
      4.2.1.2 格列本脲样品预处理第34-35 页
      4.2.1.3 双氯酚酸样品预处理第35 页
      4.2.1.4 质谱条件均相同第35 页
    4.2.2 转化菌种、最优pH及最佳底物浓度的确立第35 页
  4.3 实验结果第35-43 页
    4.3.1 吲哚美辛、格列本脲和双氯酚酸转化产物的检测第35-40 页
      4.3.1.1 吲哚美辛转化产物的检测第35-37 页
      4.3.1.2 格列本脲转化产物的检测第37-39 页
      4.3.1.3 双氯酚酸转化产物的检测第39-40 页
    4.3.2 最优转化条件的建立结果第40-42 页
    4.3.3 比较微生物转化产物同人体CYP2C9代谢产物的异同第42-43 页
    4.3.4 确立最佳模型菌种第43 页
  4.4 讨论第43-45 页
第五章 人体CYP2C9化学抑制剂对短刺小克银汉霉AS3.910药物代谢酶的抑制第45-57 页
  5.1 丙戊酸、磺胺苯吡唑和苯溴马隆第45-47 页
  5.2 实验方法第47-48 页
    5.2.1 转化方法第47-48 页
    5.2.2 转化样品的检测第48 页
  5.3 结果第48-56 页
    5.3.1 转化样品的检测结果第48-50 页
    5.3.2 丙戊酸对甲苯磺丁脲4′-羟化的抑制第50-51 页
    5.3.3 磺胺苯吡唑对甲苯磺丁脲4′-羟化的抑制第51-53 页
    5.3.4 苯溴马隆对甲苯磺丁脲4′-羟化的抑制第53-56 页
  5.4 讨论第56-57 页
第六章 结论第57-59 页
参考文献第59-65 页
致谢第65-66 页
作者简历第66 页
发表论文第66 页

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