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海藻糖合酶分子改造及在毕赤酵母中的分泌表达研究

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海藻糖合酶分子改造及在毕赤酵母中的分泌表达研究
论文目录
 
摘要第1-10页
ABSTRACT第10-12页
第1章 绪论第12-22页
  1.1 海藻糖概述第12-14页
    1.1.1 海藻糖的来源与性质第12-13页
    1.1.2 海藻糖的功能及应用第13-14页
  1.2 海藻糖合酶研究进展第14-16页
    1.2.1 海藻糖合酶的来源与性质第14-15页
    1.2.2 海藻糖合酶的结构与催化机制第15-16页
  1.3 蛋白质分子改造研究进展第16-19页
    1.3.1 定向进化第16-17页
    1.3.2 定点突变技术第17页
    1.3.3 定点饱和突变技术第17-18页
    1.3.4 海藻糖合酶修饰研究进展第18-19页
  1.4 毕赤酵母表达系统第19-21页
    1.4.1 毕赤酵母表达系统简介第19页
    1.4.2 毕赤酵母表达载体及启动子第19-20页
    1.4.3 毕赤酵母表达影响因素及发酵策略第20-21页
  1.5 课题研究背景及内容第21-22页
    1.5.1 立题背景第21页
    1.5.2 研究内容第21-22页
第2章 海藻糖合酶分子改造及酶学性质分析第22-42页
  2.1 引言第22页
  2.2 实验材料第22-25页
    2.2.1 菌株与质粒第22页
    2.2.2 药品与试剂第22-23页
    2.2.3 仪器与设备第23-24页
    2.2.4 主要试剂与培养基配制第24-25页
  2.3 实验方法第25-30页
    2.3.1 海藻糖合酶的同源建模及分子对接第25页
    2.3.2 不同来源的海藻糖合酶氨基酸序列比对第25页
    2.3.3 饱和突变库的构建第25-27页
    2.3.4 突变体库的诱导表达及筛选第27-28页
    2.3.5 突变酶活性检测及转化率计算第28页
    2.3.6 突变酶的镍柱纯化第28-29页
    2.3.7 优势位点的叠加分析第29页
    2.3.8 突变酶的最适温度及热稳定性分析第29页
    2.3.9 突变酶的最适pH及pH耐受性分析第29页
    2.3.10 突变酶的动力学参数分析第29-30页
  2.4 结果与讨论第30-40页
    2.4.1 海藻糖合酶活性中心分析及饱和突变位点的选择第30-33页
    2.4.2 饱和突变库的构建第33-34页
    2.4.3 突变子的筛选第34-36页
    2.4.4 突变酶的最适温度及热稳定性第36-37页
    2.4.5 突变酶的最适pH及pH耐受性第37页
    2.4.6 突变酶的动力学参数第37-38页
    2.4.7 突变位点的分析第38-40页
  2.5 本章小结第40-42页
第3章 突变型海藻糖合酶在毕赤酵母中的胞内表达第42-56页
  3.1 引言第42页
  3.2 实验材料第42-44页
    3.2.1 菌株与质粒第42页
    3.2.2 试剂与药品第42-43页
    3.2.3 仪器与设备第43页
    3.2.4 主要试剂与培养基配制第43-44页
  3.3 实验方法第44-48页
    3.3.1 pET-15b-tres3质粒的提取第44页
    3.3.2 PCR扩增海藻糖合酶基因第44-45页
    3.3.3 pGAPZαA质粒的提取第45页
    3.3.4 重组T载体的构建及菌落PCR第45-46页
    3.3.5 pGAPZαA-tres3的构建及阳性验证第46-47页
    3.3.6 pGAPZαA-tres3的线性化及浓缩第47页
    3.3.7 毕赤酵母感受态的制备与转化第47-48页
    3.3.8 重组毕赤酵母GS115/pGAPZαA-tres3的验证及高拷贝筛选第48页
    3.3.9 阳性重组子蛋白表达及活性检测第48页
  3.4 结果与讨论第48-55页
    3.4.1 重组表达载体构建流程第48-49页
    3.4.2 海藻糖合酶基因的获取第49页
    3.4.3 重组T载体的构建及菌落PCR第49-50页
    3.4.4 重组质粒pGAPZαA-tres3的构建及验证第50-52页
    3.4.5 重组毕赤酵母GS115/pGAPZαA-tres3的构建第52-53页
    3.4.6 海藻糖合酶的检测及酶活测定第53-55页
  3.5 本章小结第55-56页
第4章 重组毕赤酵母的发酵优化及5L发酵第56-66页
  4.1 引言第56页
  4.2 实验材料第56-57页
    4.2.1 实验菌株第56页
    4.2.2 实验药品第56页
    4.2.3 仪器设备第56页
    4.2.4 主要试剂与培养基配制第56-57页
  4.3 实验方法第57-58页
    4.3.1 菌株活化及酶活力测定第57页
    4.3.2 碳源对海藻糖合酶发酵的影响第57页
    4.3.3 碳源浓度对海藻糖合酶发酵的影响第57页
    4.3.4 氮源对海藻糖合酶发酵的影响第57-58页
    4.3.5 氮源浓度对海藻糖合酶发酵的影响第58页
    4.3.6 金属离子对海藻糖合酶发酵的影响第58页
    4.3.7 发酵条件对海藻糖合酶发酵的影响第58页
    4.3.8 不同补料方式对海藻糖合酶发酵的影响第58页
  4.4 结果与讨论第58-64页
    4.4.1 碳源对海藻糖合酶发酵的影响第58-59页
    4.4.2 葡萄糖浓度对海藻糖合酶发酵的影响第59页
    4.4.3 氮源对海藻糖合酶发酵的影响第59-60页
    4.4.4 复合氮源浓度对海藻糖合酶发酵的影响第60-61页
    4.4.5 添加金属离子对海藻糖合酶发酵的影响第61页
    4.4.6 发酵条件对海藻糖合酶发酵的影响第61-62页
    4.4.7 不同补料方式对海藻糖合酶发酵的影响第62-64页
  4.5 本章小结第64-66页
第5章 总结与展望第66-68页
  5.1 总结第66页
  5.2 展望第66-68页
参考文献第68-74页
致谢第74-76页
在学期间主要科研成果第76页

本篇论文共76页,点击这进入下载页面
 
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