论文目录 | |
| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 第一章 序言 | 第10-12页 |
| 第二章 GST-IL-33 的原核表达、纯化和鉴定 | 第12-22页 |
| · 前言 | 第12页 |
| · 实验材料 | 第12-15页 |
| · IL-33 表达菌株 | 第12页 |
| · 主要仪器 | 第12-13页 |
| · 主要试剂 | 第13页 |
| · 主要试剂配制 | 第13-15页 |
| · 实验方法 | 第15-17页 |
| · 诱导 GST-IL-33 融合蛋白表达 | 第15-16页 |
| · GST-IL-33 融合蛋白的纯化 | 第16-17页 |
| · GST-IL-33 融合蛋白 GST 标签的切除 | 第17页 |
| · Triton X-114 萃取法去除 IL-33 中残存的内毒素 | 第17页 |
| · 实验结果 | 第17-20页 |
| · 诱导 GST-IL-33 融合蛋白表达 | 第17-18页 |
| · GST-IL-33 融合蛋白的纯化 | 第18-19页 |
| · GST-IL-33 融合蛋白的 GST 标签切除 | 第19-20页 |
| · 讨论 | 第20-21页 |
| · 小结 | 第21-22页 |
| 第三章 IL-33 在非感染性皮肤伤口愈合中的作用 | 第22-37页 |
| · 前言 | 第22页 |
| · 实验材料 | 第22-24页 |
| · 实验动物 | 第22页 |
| · 主要仪器设备 | 第22-23页 |
| · 主要试剂 | 第23页 |
| · 主要溶液配制 | 第23-24页 |
| · 实验方法 | 第24-28页 |
| · 皮肤伤口模型的建立 | 第24页 |
| · 用药方法 | 第24页 |
| · 组织切片 HE 染色、Masson 染色和免疫组织化学 | 第24-25页 |
| · 各种细胞因子基因表达鉴定 | 第25-27页 |
| · IL-33 促成纤维细胞的迁移作用 | 第27-28页 |
| · 实验结果 | 第28-34页 |
| · IL-33 促成纤维细胞的迁移作用 | 第28-29页 |
| · 小鼠非感染性皮肤损伤后局部 IL-33 的表达 | 第29页 |
| · 小鼠皮肤伤口愈合时间和愈合率 | 第29-30页 |
| · 伤口组织切片 HE 染色、胶原染色和免疫组化 | 第30-32页 |
| · IL-33 对各种细胞因子基因表达谱的影响 | 第32-34页 |
| · 讨论 | 第34-35页 |
| · 小结 | 第35-37页 |
| 第四章 IL-33 在感染性皮肤伤口愈合中的作用 | 第37-46页 |
| · 前言 | 第37页 |
| · 实验材料 | 第37-39页 |
| · 实验动物 | 第37页 |
| · 主要仪器设备 | 第37-38页 |
| · 主要试剂 | 第38页 |
| · 主要溶液配制 | 第38-39页 |
| · 实验方法 | 第39-40页 |
| · 金黄色葡萄球菌（MRSA）的培养 | 第39页 |
| · 伤口模型的建立 | 第39页 |
| · 用药方法 | 第39-40页 |
| · 组织切片 HE 染色和胶原染色（同第三章） | 第40页 |
| · 各种细胞因子基因表达鉴定（同第三章） | 第40页 |
| · 流式细胞术检测 Th17 细胞 | 第40页 |
| · 实验结果 | 第40-45页 |
| · 小鼠皮肤感染伤口局部 IL-33 的表达 | 第40-41页 |
| · 小鼠皮肤感染伤口愈合时间和愈合率 | 第41-42页 |
| · 伤口组织切片 HE 染色、Masson 染色 | 第42-43页 |
| · 流式细胞术检测 Th17 细胞 | 第43-44页 |
| · IL-33 对细胞因子基因表达谱的影响 | 第44-45页 |
| · 讨论 | 第45-46页 |
| 全文总结 | 第46-48页 |
| 参考文献 | 第48-52页 |
| 已发表综述 | 第52-59页 |
| 参考文献 | 第56-59页 |
| 附录1 英文缩写语中文对照 | 第59-61页 |
| 附录2 攻读学位期间发表的论文 | 第61-62页 |
| 致谢 | 第62
页 |
