结球白菜离体转化体系的建立及转LMV-CP基因植株的获得 |
论文目录 | | | 缩 写 词 | 第1-5
页 | | 中文摘要 | 第5-6
页 | | 英文摘要 | 第6-8
页 | | 前 言 | 第8-10
页 | | 第一章 进展与评述 | 第10-22
页 | | 1．1 白菜类作物转基因技术研究进展 | 第10-16
页 | | 1．1．1 高频再生体系的建立 | 第10
页 | | 1．1．2 植物转基因方法 | 第10-15
页 | | 1．1．3 转化株后代的遗传行为 | 第15-16
页 | | 1．1．4 存在问题和展望 | 第16
页 | | 1．2 衣壳蛋白介导保护（CPMP）抗性机理研究 | 第16-22
页 | | 1．2．1 蛋白质水平上介导的抗性 | 第17-19
页 | | 1．2．2 RNA调节的抗性（转录后基因沉默介导的抗性） | 第19-20
页 | | 1．2．3 展望 | 第20-22
页 | | 第二章 结球白菜离体培养植株再生 | 第22-33
页 | | 2．1 实验材料和方法 | 第22-24
页 | | 2．1．1 实验材料 | 第22
页 | | 2．1．2 培养方法 | 第22-23
页 | | 2．1．3 结球白菜离体再生的若干影响因子实验方法 | 第23
页 | | 2．1．4 试管苗生根与移苗入土 | 第23-24
页 | | 2．2 实验结果和分析 | 第24-30
页 | | 2．2．1 AgNO_3对芽分化的影响 | 第24
页 | | 2．2．2 基因型对子叶-子叶柄形态发生的影响 | 第24-26
页 | | 2．2．3 外植体类型对形态发生的影响 | 第26-27
页 | | 2．2．4 玻璃苗研究 | 第27-30
页 | | 2．2．5 芽苗生根与移苗入土 | 第30
页 | | 2．3 讨论 | 第30-33
页 | | 2．3．1 基因型的影响 | 第30
页 | | 2．3．2 真叶可作为结球白菜离体转化的受体 | 第30-31
页 | | 2．3．3 玻璃苗形成因素 | 第31-33
页 | | 第三章 农杆菌介导LMV-CP基因转化结球白菜 | 第33-43
页 | | 3．1 材料与方法 | 第33-36
页 | | 3．1．1 材料 | 第33
页 | | 3．1．2 农杆菌介导的植物转化 | 第33-36
页 | | 3．2 实验结果和分析 | 第36-40
页 | | 3．2．1 Basta对结球白菜No．80子叶-子叶柄再生率的影响 | 第36
页 | | 3．2．2 羧芐青霉素对结球白菜“No．80”芽分化的影响 | 第36-37
页 | | 3．2．3 结球白菜LMV-CP基因的转化 | 第37-40
页 | | 3．3 讨论 | 第40-43
页 | | 3．3．1 选择压 | 第40-41
页 | | 3．3．2 抗生素 | 第41
页 | | 3．3．3 影响转化效率因素的优化 | 第41
页 | | 3．3．4 外植体类型对转化的影响 | 第41-43
页 | | 第四章 转基因结球白菜的分子生物学鉴定 | 第43-50
页 | | 4．1 实验材料和方法 | 第43-48
页 | | 4．1．1 CTAB法提取植物总DNA | 第43
页 | | 4．1．2 碱法小量提取质粒DNA | 第43-44
页 | | 4．1．3 PCR检测 | 第44-45
页 | | 4．1．4 PCR-Southern斑点杂交检测 | 第45-48
页 | | 4．2 实验结果和分析 | 第48-49
页 | | 4．2．1 转基因植株的PCR鉴定 | 第48-49
页 | | 4．2．2 转基因植株的PCR-Southern斑点杂交鉴定 | 第49
页 | | 4．3 讨论 | 第49-50
页 | | 第五章 结论 | 第50-51
页 | | 参考文献 | 第51-57
页 | | 致谢 | 第57-58
页 | | 附录 | 第58页 |
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