论文目录 | |
| 中文摘要 | 第1-12页 |
| ABSTRACT | 第12-18页 |
| 中英文缩略词对照表 | 第19-22页 |
| 前言 | 第22-24页 |
| 1. 实验材料 | 第24-26页 |
| 1.1 实验动物 | 第24页 |
| 1.2 实验细胞 | 第24页 |
| 1.3 药品和试剂 | 第24-25页 |
| 1.4 主要实验仪器 | 第25-26页 |
| 2.实验方法 | 第26-34页 |
| 2.1 动物饲养 | 第26页 |
| 2.2 高血脂模型的建立及给药 | 第26页 |
| 2.3 标本取材 | 第26-27页 |
| 2.4 HE染色观察脂肪积累 | 第27页 |
| 2.5 酶法检测血浆TC、TG | 第27页 |
| 2.6 外泌体提取及鉴定 | 第27-29页 |
| 2.6.1 超速离心法提取外泌体 | 第27-28页 |
| 2.6.2 透射电子显微镜观察外泌体形态 | 第28页 |
| 2.6.3 Zeta view检测外泌体粒径 | 第28页 |
| 2.6.4 Western blot检测蛋白表达 | 第28-29页 |
| 2.7 HPLC检测外泌体中Pae含量 | 第29-30页 |
| 2.7.1 色谱条件选定 | 第29页 |
| 2.7.2 生物样品预处理 | 第29-30页 |
| 2.8 RT-PCR检测miR-223含量 | 第30-31页 |
| 2.9 miR-223转染到RAECs中 | 第31页 |
| 2.10 RAECs提取及鉴定 | 第31-32页 |
| 2.10.1 大鼠尾胶原制备 | 第31页 |
| 2.10.2 细胞培养瓶的包被 | 第31页 |
| 2.10.3 RAECs的分离与培养 | 第31-32页 |
| 2.10.4 差速消化、贴壁法纯化细胞 | 第32页 |
| 2.10.5 免疫组织化学法鉴定RAECs | 第32页 |
| 2.11 免疫荧光显微镜检测RAECs对exo摄取情况 | 第32-33页 |
| 2.11.1 PKH67标记外泌体 | 第32-33页 |
| 2.11.2 免疫荧光显微镜下观察 | 第33页 |
| 2.12 CCK-8 检测RAECs存活率 | 第33页 |
| 2.13 细胞动态分析仪检测RAECs粘附功能 | 第33页 |
| 2.14 台盼蓝法检测RAECs活性 | 第33-34页 |
| 2.15 Elisa检测IL-1β、IL-6 水平 | 第34页 |
| 2.16 统计学方法与处理 | 第34页 |
| 3. 结果 | 第34-47页 |
| 3.1 高血脂模型建立 | 第34-35页 |
| 3.2 丹皮酚抑制高血脂大鼠血脂含量及炎性介质水平 | 第35-36页 |
| 3.3 外泌体提取鉴定 | 第36-38页 |
| 3.4 RAECs细胞提取及鉴定 | 第38-39页 |
| 3.5 RAECs摄取外泌体 | 第39-40页 |
| 3.6 M-exo对RAECs存活率的影响 | 第40页 |
| 3.7 外泌体中丹皮酚含量测定及该含量对RAECs的影响 | 第40-42页 |
| 3.8 Pae-exo升高RAECs存活率降低炎性反应 | 第42-43页 |
| 3.9 Pae-exo中miR-223含量增加 | 第43-44页 |
| 3.10 Pae-exo通过升高miR-223含量抑制RAECs炎性反应 | 第44-46页 |
| 3.11 Pae-exo通过miR-223调节NLRP3信号通路 | 第46-47页 |
| 4. 讨论 | 第47-52页 |
| 4.1 高血脂大鼠模型的复制 | 第47页 |
| 4.2 丹皮酚抑制高血脂大鼠血脂含量减少炎症介质释放 | 第47-48页 |
| 4.3 外泌体的提取鉴定 | 第48-49页 |
| 4.4 Pae-exo降低RAECs炎症反应 | 第49-50页 |
| 4.5 Pae对miR-223的调控作用 | 第50-51页 |
| 4.6 Pae-exo通过升高高血脂大鼠血浆外泌体miR-223抑制NLRP3信号通路 | 第51-52页 |
| 全文总结 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-58页 |
| 综述 | 第58-72页 |
| 参考文献 | 第67-72页 |
| 个人简介 | 第72-73页 |
| 致谢 | 第73页 |
