香椿叶有效成分的提取分离及其生物活性
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有效成分的分离与提取论文
香椿叶有效成分的提取分离及其生物活性
论文目录
摘要
第1-6页
ABSTRACT
第6-12页
第一章 绪论
第12-19页
· 香椿简介
第12页
· 化学成分研究
第12-15页
· 黄酮类化合物
第12-13页
· 酚类
第13页
· 营养成分
第13-14页
· 挥发成分
第14页
· 其它成分
第14-15页
· 生物活性研究
第15-17页
· 抑菌
第15页
· 抗氧化
第15页
· 降血糖
第15-16页
· 抗肿瘤
第16页
· 其他作用
第16-17页
· 本论文的立题背景及主要研究内容
第17-19页
· 立题背景及研究意义
第17页
· 主要研究内容
第17-19页
第二章 香椿叶总黄酮的提取及其抗氧化活性
第19-34页
· 实验材料与仪器
第19页
· 材料与试剂
第19页
· 仪器与设备
第19页
· 实验方法
第19-24页
· 香椿叶的前处理
第19页
· 总黄酮提取率测定芦丁标准曲线的绘制
第19-20页
· 芦丁标准曲线的绘制
第20页
· 香椿叶中总黄酮的提取与测定
第20-21页
· 抗氧化活性检测
第21-22页
· 氧自由基清除能力检测(ORAC)
第21-22页
· ABTS 自由基清除能力测定(ABTS)
第22页
· DPPH 自由基清除能力测定(DPPH)
第22页
· 单因素实验设计
第22-23页
· 乙醇浓度对提取工艺的影响
第22-23页
· 料液比对提取工艺的影响
第23页
· 响应面优化实验设计
第23-24页
· 数据分析
第24页
· 实验结果
第24-33页
· 各因素对黄酮提取率的影响
第24-25页
· 乙醇浓度对黄酮提取率的影响
第24页
· 液料比对黄酮提取率的影响
第24-25页
· 响应面优化香椿叶黄酮超声波提取工艺条件
第25-31页
· 优化总黄酮提取率
第26-28页
· 优化氧自由基吸收能力(ORAC 值)
第28-31页
· 最优提取条件的确定
第31页
· 最优条件提取黄酮粗提物的抗氧化活性
第31-33页
· 本章小结
第33-34页
第三章 香椿叶黄酮粗提物的生物活性研究
第34-41页
· 材料与设备
第34页
· 材料与试剂
第34页
· 仪器与设备
第34页
· 实验方法
第34-37页
· 香椿叶黄酮粗提物的制备
第34-35页
· 抗增殖活性检测
第35页
· -淀粉酶抑制活性的测定
第35-36页
· 蔗糖酶和麦芽糖酶抑制活性测定
第36页
· 数据分析
第36-37页
· 结果与讨论
第37-39页
· 黄酮粗提物对癌细胞的增殖抑制活性
第37-38页
· 黄酮粗提物对糖尿病关键酶的抑制活性
第38-39页
· 本章小结
第39-41页
第四章 香椿叶黄酮主要活性部位的筛选
第41-50页
· 材料与设备
第41页
· 材料与试剂
第41页
· 仪器与设备
第41页
· 实验方法
第41-42页
· 黄酮粗提物的不同极性部位的制备
第41-42页
· 各极性部位的抗氧化活性评价
第42页
· 各极性部位的抗增殖活性评价
第42页
· 数据分析
第42页
· 结果与讨论
第42-48页
· 各极性部位的收率
第42-43页
· 各极性部位的抗氧化活性
第43-44页
· 各极性部位的抗增殖活性
第44-46页
· 各极性部位的糖尿病关键酶抑制活性
第46-48页
· 本章小结
第48-50页
第五章 乙酸乙酯部位的活性成分分离及结构鉴定
第50-69页
· 材料与设备
第50-51页
· 材料与试剂
第50-51页
· 仪器与设备
第51页
· 实验方法
第51-53页
· 聚酰胺树脂柱层析
第51页
· 高效液相色谱定性分析
第51-52页
· 中低压制备液相分离
第52页
· 化合物结构分析
第52页
· 化合物的生物活性测定
第52-53页
· 数据分析
第53页
· 结果与讨论
第53-67页
· 单体化合物的分离纯化
第53-54页
· HPLC 定性分析
第54-56页
· 单体化合物的结构鉴定
第56-63页
· 化合物 1 的结构鉴定
第56-59页
· 化合物 2 的结构鉴定
第59-60页
· 化合物 3 的结构鉴定
第60-62页
· 化合物 4 的结构鉴定
第62-63页
· 单体化合物的抗氧化活性
第63-64页
· 单体化合物的抗增殖活性
第64-66页
· 单体化合物的糖尿病关键酶抑制活性
第66-67页
· 本章小结
第67-69页
结论和展望
第69-71页
参考文献
第71-78页
攻读硕士学位期间取得的研究成果
第78-79页
致谢
第79-80页
附件
第80 页
本篇论文共
80
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