论文目录 | |
| 缩略词表 | 第1-4页 |
| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-10页 |
| 第一章 前言 | 第10-21页 |
| 1.1 植物细胞形态建成的研究进展 | 第10-11页 |
| 1.2 拟南芥果荚的结构与发育 | 第11-14页 |
| 1.3 细胞骨架在植物细胞形态建成及盐胁迫应答中的作用 | 第14-18页 |
| 1.3.1 微管在植物细胞形态建成中的作用 | 第14-15页 |
| 1.3.2 微丝在植物细胞形态建成及盐胁迫应答中的作用 | 第15-18页 |
| 1.4 植物维管组织的发育、结构和功能 | 第18-19页 |
| 1.5 启动子在基因表达调控中的作用及其类型 | 第19页 |
| 1.6 研究的目的和意义 | 第19-21页 |
| 第二章 Athspr突变体与野生型不同组织器官的细胞形态差异 | 第21-30页 |
| 2.1 材料 | 第21页 |
| 2.2 方法 | 第21-22页 |
| 2.2.1 扫描电镜观察 | 第21页 |
| 2.2.2 石蜡切片制作 | 第21-22页 |
| 2.3 结果 | 第22-27页 |
| 2.3.1 野生型和Athspr突变体下胚轴和叶柄细胞的形态差异 | 第22-23页 |
| 2.3.2 野生型与Athspr突变体花和果荚细胞的形态差异 | 第23-27页 |
| 2.4 讨论 | 第27-30页 |
| 第三章 Athspr突变体与野生型细胞骨架的形态差异 | 第30-38页 |
| 3.1 植物材料 | 第30页 |
| 3.2 抗体、酶及化学试剂 | 第30页 |
| 3.3 方法 | 第30-32页 |
| 3.3.1 微丝骨架的观察 | 第30-31页 |
| 3.3.2 微管骨架的免疫荧光染色观察 | 第31-32页 |
| 3.4 结果 | 第32-35页 |
| 3.4.1 Athspr突变体与野生型微丝骨架的形态差异 | 第32-34页 |
| 3.4.2 Athspr突变体与野生型微管骨架的形态观察 | 第34-35页 |
| 3.5 讨论 | 第35-38页 |
| 第四章 Athspr基因启动子的时空表达模式分析 | 第38-50页 |
| 4.1 材料 | 第38-39页 |
| 4.1.1 植物材料 | 第38页 |
| 4.1.2 酶与化学试剂 | 第38页 |
| 4.1.3 菌株和载体 | 第38-39页 |
| 4.2 实验方法 | 第39-42页 |
| 4.2.1 启动子的克隆与表达载体的构建 | 第39-41页 |
| 4.2.2 转化 | 第41页 |
| 4.2.3 筛选 | 第41页 |
| 4.2.4 GUS染色及石蜡切片 | 第41-42页 |
| 4.3 结果 | 第42-47页 |
| 4.3.1 Athspr突变体及1.7kb-pro_(Athspr)：：GUS转基因植株中的GUS时空表达模式 | 第42-44页 |
| 4.3.2 4.3 kb-pro_(Athspr)：：GUS载体转化及转基因植株筛选 | 第44-45页 |
| 4.3.3 转基因植株中的GUS表达模式 | 第45-46页 |
| 4.3.4 Athspr启动子活性对植物激素的响应 | 第46-47页 |
| 4.4 讨论 | 第47-50页 |
| 4.4.1 Athspr启动子的组织表达特异性对维管组织发育具有重要作用 | 第47-48页 |
| 4.4.2 Athspr启动子的活性受到不同激素信号的调控 | 第48-50页 |
| 第五章 结论与展望 | 第50-52页 |
| 5.1 结论 | 第50页 |
| 5.2 展望 | 第50-52页 |
| 参考文献 | 第52-61页 |
| 在学期间的研究成果 | 第61-62页 |
| 致谢 | 第62页 |
