论文目录 | |
| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-14页 |
| 第一章 绪论 | 第14-50页 |
| · 引言 | 第14页 |
| · DNA损伤的研究进展 | 第14-20页 |
| · DNA损伤的原因 | 第14-16页 |
| · DNA损伤的类型及其生物效应 | 第16-17页 |
| · DNA损伤的检测 | 第17-20页 |
| · 自由基的研究进展 | 第20-27页 |
| · 自由基 | 第20-22页 |
| · 自由基的产生 | 第21-22页 |
| · 自由基与健康及人类对自由基的认识 | 第22页 |
| · 自由基的类型及产生方法 | 第22-27页 |
| · 氧自由基的产生 | 第23-25页 |
| · 氧自由基的危害 | 第25-27页 |
| · 室温离子液体的研究进展 | 第27-29页 |
| · 室温离子液体的合成方法 | 第28页 |
| · 传统的合成方法 | 第28页 |
| · 新型的合成方法 | 第28页 |
| · 室温离子液体在DNA损伤中的电分析化学应用 | 第28-29页 |
| · 抗氧化剂的研究进展 | 第29-39页 |
| · 抗氧化剂的种类 | 第30-38页 |
| · 酶类抗氧化剂 | 第30-32页 |
| · 酶类抗氧化剂的种类 | 第30-32页 |
| · 酶类抗氧化剂之间的关系 | 第32页 |
| · 非酶类抗氧化剂 | 第32-36页 |
| · 合成抗氧化剂 | 第36-38页 |
| · 抗氧化剂的抗氧化活性研究 | 第38-39页 |
| · 抗氧化剂的安全性评价体系 | 第39页 |
| · 论文的指导思想和主要内容 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-50页 |
| 第二章 水溶液中基于葡萄糖氧化酶催化的类FENTON反应产生羟自由基及其对DNA损伤的电化学研究 | 第50-68页 |
| · 引言 | 第50-51页 |
| · 实验部分 | 第51-53页 |
| · 仪器与试剂 | 第51页 |
| · DNA-GOx/GCE的制备 | 第51-52页 |
| · 实验方法 | 第52-53页 |
| · 结果与讨论 | 第53-62页 |
| · 羟自由基的检测 | 第53-54页 |
| · DNA损伤的电化学研究 | 第54-57页 |
| · DNA损伤的检测 | 第54-56页 |
| · DNA损伤的验证 | 第56-57页 |
| · 最佳实验条件的选择 | 第57-59页 |
| · 最佳pH的选择 | 第57-58页 |
| · 最佳培养时间的选择 | 第58页 |
| · FeSO_4和葡萄糖最佳浓度的选择 | 第58-59页 |
| · 抗氧化剂的保护作用 | 第59-62页 |
| · 抗氧化剂抑制DNA损伤 | 第59-60页 |
| · 抗氧化剂浓度的影响 | 第60-61页 |
| · 抗氧化剂培养时间的影响 | 第61-62页 |
| · 结论 | 第62页 |
| 参考文献 | 第62-68页 |
| 第三章 室温离子液体中基于葡萄糖氧化酶催化的类_FENTON反应产生·OH及其对DNA损伤的电化学研究 | 第68-82页 |
| · 引言 | 第68-69页 |
| · 实验部分 | 第69-71页 |
| · 仪器与试剂 | 第69-70页 |
| · DNA-GOx/GCE的制备 | 第70页 |
| · 实验方法 | 第70-71页 |
| · 结果与讨论 | 第71-78页 |
| · DNA损伤的电化学研究 | 第71-74页 |
| · DNA损伤的电化学检测原理 | 第71-72页 |
| · [BMIM][PF_6]与水溶液中DNA损伤对比 | 第72-73页 |
| · DNA损伤的验证 | 第73-74页 |
| · 实验条件的优化 | 第74-75页 |
| · 最佳培养时间 | 第74-75页 |
| · 最佳FeSO_4和葡萄糖浓度 | 第75页 |
| · AA、AE、芦丁的抗氧化活性研究 | 第75-78页 |
| · 抗氧化剂抑制DNA损伤研究 | 第75-76页 |
| · AA、AE、芦丁浓度的影响 | 第76-77页 |
| · AA、AE和芦丁抑制DNA损伤的机理 | 第77页 |
| · 抗氧化剂浸泡时间的影响 | 第77-78页 |
| · 结论 | 第78页 |
| 参考文献 | 第78-82页 |
| 第四章 水溶液中黄嘌呤氧化酶催化的类FENTON反应产生羟自由基及其对DNA损伤的电化学研究 | 第82-105页 |
| Part Ⅰ：黄嘌呤氧化酶催化黄嘌呤的类Fenton反应产生·OH及其对DNA损伤的电化学研究 | 第82-93页 |
| · 引言 | 第82-83页 |
| · 实验部分 | 第83-85页 |
| · 仪器与试剂 | 第83-84页 |
| · DNA-XOD/GCE电极的制备 | 第84页 |
| · 实验方法 | 第84-85页 |
| · 结果与讨论 | 第85-93页 |
| · 羟自由基的检测 | 第85-86页 |
| · DNA损伤的电化学研究 | 第86-88页 |
| · DNA损伤机理 | 第86-87页 |
| · DNA损伤的验证 | 第87-88页 |
| · 实验条件的优化 | 第88-90页 |
| · 最佳pH的选择 | 第88-89页 |
| · 最佳培养时间的选择 | 第89页 |
| · FeSO_4和黄嘌呤最佳浓度的选择 | 第89-90页 |
| · 抗氧化剂抑制DNA损伤 | 第90-93页 |
| · AA、AE和芦丁清除·OH能力研究 | 第90-91页 |
| · AA、AE和芦丁浓度的影响 | 第91-92页 |
| · 培养时间的影响 | 第92-93页 |
| Part Ⅱ：黄嘌呤氧化酶催化次黄嘌呤的类Fenton反应产生·OH及其对DNA损伤的电化学研究 | 第93-100页 |
| · 羟自由基的检测 | 第94页 |
| · DNA损伤的电化学研究 | 第94-96页 |
| · DNA损伤的检测 | 第94-95页 |
| · DNA损伤的验证 | 第95-96页 |
| · 最佳实验条件的选择 | 第96-97页 |
| · 抗氧化剂抑制DNA损伤的研究 | 第97-100页 |
| · AA、AE和芦丁清除·OH能力研究 | 第97-98页 |
| · AA、AE和芦丁浓度的影响 | 第98-99页 |
| · 培养时间的影响 | 第99-100页 |
| 结论 | 第100页 |
| 参考文献 | 第100-105页 |
| 附录 | 第105-106页 |
| 致谢 | 第106
页 |
