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登革热病毒分型及患者细胞因子mRNA水平研究
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登革热病毒分型及患者细胞因子mRNA水平研究
论文目录
 
摘要第1-7页
Abstract第7-8页
注释说明清单第15-16页
引言第16-18页
1 HRM分析技术在登革热病毒分型中的研究和应用第18-41页
　　　　1.1 前言第18-19页
　　　　1.2 材料与方法第19-23页
　　　　　　　　1.2.1 细胞株第19页
　　　　　　　　1.2.2 病毒株第19页
　　　　　　　　1.2.3 主要仪器第19-20页
　　　　　　　　1.2.4 主要试剂第20-21页
　　　　　　　　1.2.5 主要溶液的配制第21-22页
　　　　　　　　1.2.6 引物设计与合成第22-23页
　　　　1.3 实验方法第23-29页
　　　　　　　　1.3.1 细胞培养第23页
　　　　　　　　1.3.2 病毒培养第23页
　　　　　　　　1.3.3 病毒RNA提取第23-24页
　　　　　　　　1.3.4 RNA质量检测第24页
　　　　　　　　1.3.5 cDNA合成第24-25页
　　　　　　　　1.3.6 特异性试验第25页
　　　　　　　　1.3.7 PCR扩增及HRM分析第25-26页
　　　　　　　　1.3.8 灵敏度试验第26页
　　　　　　　　1.3.9 测序验证第26-27页
　　　　　　　　1.3.10 荧光PCR验证第27-28页
　　　　　　　　1.3.11 普通PCR验证第28-29页
　　　　1.4 实验结果第29-37页
　　　　　　　　1.4.1 正常C6/36细胞第29页
　　　　　　　　1.4.2 病毒在C6/36细胞中增殖第29-30页
　　　　　　　　1.4.3 病毒RNA提取结果第30页
　　　　　　　　1.4.4 引物特异性第30-31页
　　　　　　　　1.4.5 PCR-HRM分析结果第31-32页
　　　　　　　　1.4.6 PCR-HRM灵敏度第32-33页
　　　　　　　　1.4.7 临床样本检测结果第33-34页
　　　　　　　　1.4.8 测序结果第34-35页
　　　　　　　　1.4.9 荧光PCR结果第35-36页
　　　　　　　　1.4.10 普通PCR结果第36-37页
　　　　1.5 讨论第37-41页
2 登革热患者体内细胞因子mRNA表达水平及意义第41-56页
　　　　2.1 前言第41页
　　　　2.2 材料与方法第41-46页
　　　　　　　　2.2.1 病例筛选第41页
　　　　　　　　2.2.2 健康对照第41页
　　　　　　　　2.2.3 主要仪器第41-42页
　　　　　　　　2.2.4 主要试剂第42-43页
　　　　　　　　2.2.5 主要溶液的配制第43-44页
　　　　　　　　2.2.6 引物设计与合成第44页
　　　　　　　　2.2.7 比较CT值法(2~(-ΔΔCT))公式推导第44-46页
　　　　2.3 实验方法第46-49页
　　　　　　　　2.3.1 总RNA提取第46-47页
　　　　　　　　2.3.2 RNA质量检测第47页
　　　　　　　　2.3.3 cDNA合成第47-48页
　　　　　　　　2.3.4 标准曲线制备第48页
　　　　　　　　2.3.5 RT-PCR检测mRNA表达水平第48-49页
　　　　　　　　2.3.6 统计学分析第49页
　　　　2.4 实验结果第49-54页
　　　　　　　　2.4.1 总RNA提取结果第49页
　　　　　　　　2.4.2 标准曲线制备结果第49-50页
　　　　　　　　2.4.3 RT-PCR检测结果第50-52页
　　　　　　　　2.4.4 数据分析第52-54页
　　　　2.5 讨论第54-56页
结论第56-57页
参考文献第57-62页
附录A 双脱氧终止法测序结果第62-66页
后记或致谢第66-67页
作者简介及读研期间主要科研成果第67页

本篇论文共67页，点击这进入下载页面。
 
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