论文目录 | |
| 摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 第一章 绪论 | 第11-24页 |
| 1.1 纳米材料概述 | 第11-13页 |
| 1.1.1 金纳米颗粒 | 第11页 |
| 1.1.2 金纳米颗粒的性质 | 第11-13页 |
| 1.2 等离子散射的影响因素 | 第13-14页 |
| 1.2.1 尺寸的影响 | 第13页 |
| 1.2.2 形状的影响 | 第13-14页 |
| 1.2.3 粒子间距的影响 | 第14页 |
| 1.2.4 溶剂的影响 | 第14页 |
| 1.3 金纳米颗粒的应用 | 第14-15页 |
| 1.4 暗场显微镜 | 第15-16页 |
| 1.5 本论文的研究意义 | 第16-18页 |
| 参考文献 | 第18-24页 |
| 第二章 基于活化等离子体金纳米粒子二聚体用于细胞表面HER2蛋白的暗场原位成像 | 第24-43页 |
| 2.1 引言 | 第24-25页 |
| 2.2 实验试剂与仪器 | 第25-26页 |
| 2.2.1 材料与试剂 | 第25-26页 |
| 2.2.2 仪器 | 第26页 |
| 2.3 实验部分 | 第26-29页 |
| 2.3.1 制备PEG-AuNPs | 第26页 |
| 2.3.2 制备Au_1-N_3 | 第26-27页 |
| 2.3.3 制备DNA1/Au_1-N_3 | 第27页 |
| 2.3.4 制备Au_2-C≡C | 第27页 |
| 2.3.5 制备Anti-HER2/Au_2-C≡C | 第27页 |
| 2.3.6 细胞培养 | 第27-28页 |
| 2.3.7 暗场成像(DFM)检测溶液中的Cu~(2+) | 第28页 |
| 2.3.8 DFM检测细胞中的Cu~+ | 第28页 |
| 2.3.9 DFM检测细胞内滚环复制(RCA)后Cu~+的浓度 | 第28页 |
| 2.3.10 DFM检测细胞上的人表皮生长因子受体蛋白(HER2) | 第28-29页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第29-37页 |
| 2.4.1 实验原理 | 第29-31页 |
| 2.4.2 探针的性质 | 第31-32页 |
| 2.4.3 Cu~+反应的特异性 | 第32-33页 |
| 2.4.4 Cu~(2+)与探针之间孵育时间的优化 | 第33-34页 |
| 2.4.5 检测大鼠血清中Cu~(2+) | 第34-35页 |
| 2.4.6 RCA的DFM成像 | 第35页 |
| 2.4.7 Cu~(2+)浓度的优化 | 第35-36页 |
| 2.4.8 细胞的DFM成像 | 第36-37页 |
| 2.5 结论 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-43页 |
| 第三章 基于四嗪/反式环辛烯环加成反应AuNPs聚合物对目标物的定量可视化测试和细胞内的暗场原位成像 | 第43-59页 |
| 3.1 引言 | 第43-44页 |
| 3.2 实验试剂与设备 | 第44-45页 |
| 3.2.1 材料和试剂 | 第44页 |
| 3.2.2 仪器 | 第44-45页 |
| 3.3 实验部分 | 第45-47页 |
| 3.3.1 PEG-AuNPs的制备 | 第45页 |
| 3.3.2 Au_1-(E)cyclooctene的制备 | 第45页 |
| 3.3.3 Au_2-N_4的制备 | 第45页 |
| 3.3.4 DNA2/Au_1-(E)cyclooctene的制备 | 第45-46页 |
| 3.3.5 Au_3-N_4的制备 | 第46页 |
| 3.3.6 检测ATP | 第46页 |
| 3.3.7 细胞培养 | 第46页 |
| 3.3.8 细胞的暗场成像(DFM) | 第46-47页 |
| 3.4 结果和讨论 | 第47-54页 |
| 3.4.1 二聚体形成原理 | 第47页 |
| 3.4.2 探针的性质 | 第47-48页 |
| 3.4.3 Au_1-(E)cyclooctene和Au_2-N_4反应时间的优化 | 第48-49页 |
| 3.4.4 探针反应的特异性 | 第49-50页 |
| 3.4.5 AuNPs二聚体的表征 | 第50页 |
| 3.4.6 基于AuNPs聚合物检测ATP的机理 | 第50-51页 |
| 3.4.7 AuNPs聚合物的表征 | 第51-52页 |
| 3.4.8 用于ATP视觉检测的AuNPs聚合物 | 第52-53页 |
| 3.4.9 细胞内ATP暗场原位成像 | 第53-54页 |
| 3.5 结论 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-59页 |
| 第四章 基于可生物降解的MnO_2纳米片的DNA酶的再循环扩增：灵敏检测细胞内微小RNA | 第59-70页 |
| 4.1 引言 | 第59页 |
| 4.2 实验试剂与仪器 | 第59-60页 |
| 4.2.1 材料与试剂 | 第59-60页 |
| 4.2.2 仪器 | 第60页 |
| 4.3 实验部分 | 第60-61页 |
| 4.3.1 MnO_2纳米片和MnO_2-DNA配合物的合成 | 第60-61页 |
| 4.3.2 体外MnO_2-DNAzyme扩增检测miRNA | 第61页 |
| 4.3.3 细胞的培养和制备 | 第61页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第61-66页 |
| 4.4.1 实验原理 | 第61-62页 |
| 4.4.2 实验结果分析 | 第62-66页 |
| 4.5 结论 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-70页 |
| 攻读硕士期间论文发表情况 | 第70-71页 |
| 致谢 | 第71页 |
