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重组腺病毒载体介导短发夹RNA共调控人脑胶质瘤细胞中miR-221/222的表达及功能的体外研究

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重组腺病毒载体介导短发夹RNA共调控人脑胶质瘤细胞中miR-221/222的表达及功能的体外研究
论文目录
 
中文摘要第1-6 页
Abstract第6-8 页
缩略语/符号说明第8-12 页
前言第12-17 页
  研究现状、成果第12-15 页
  研究目的、方法第15-17 页
一、突变型与经典型Ad-shmiR-221/222共表达腺病毒载体的构建及其鉴定第17-43 页
  · 引言第17-18 页
  · 对象和方法第18-30 页
    · 仪器和试剂第18-19 页
    · shRNA的靶序列的选择第19 页
    · shRNA表达框的设计与合成第19-20 页
    · 将shRNA表达框亚克隆至相应的腺病毒穿梭质粒上第20-23 页
    · 将两个腺病毒穿梭质粒融合以产生shRNA的共表达框第23-25 页
    · 从pGenesil-Co上通过LR体外同源重组将shmiR-221和shmiR-222的共表达框移至pGSadeno腺病毒表达载体上第25-26 页
    · 包装重组腺病毒第26-28 页
    · 重组腺病毒的扩增提取与滴度测定第28-30 页
  · 结果第30-37 页
    · 腺病毒穿梭质粒鉴定结果第30-32 页
    · 重组腺病毒载体鉴定结果第32-34 页
    · 包装后荧光验证重组腺病毒的产生第34-35 页
    · 重组腺病毒的扩增提取与滴度测定第35-37 页
  · 讨论第37-42 页
  · 小结第42-43 页
二、突变型与经典型Ad-shmiR-221/222共表达腺病毒载体在LN229和U251胶质瘤细胞中共调控miR-221和miR-222的表达和功能的体外研究第43-81 页
  · 引言第43-45 页
  · 对象和方法第45-57 页
    · 仪器和试剂第45-46 页
    · 细胞培养第46-47 页
    · 实验分组及重组腺病毒载体转导第47 页
    · miRNA实时荧光定量PCR第47-50 页
    · Western blot检测相关蛋白的表达第50-55 页
    · 流式细胞术分析细胞周期第55-56 页
    · 倒置相差显微镜观察形态第56 页
    · Caspase-3/7萤光素酶法检测细胞凋亡第56-57 页
  · 结果第57-74 页
    · 加入氯仿后细胞裂解物分为三相第57 页
    · 微量紫外/可见分光光度计测定总RNA的浓度第57-58 页
    · 琼脂糖凝胶电泳观察总RNA第58 页
    · 微量紫外/可见分光光度计测定cDNA的浓度第58-59 页
    · 琼脂糖凝胶电泳观察cDNA第59-60 页
    · miRNA实时荧光定量PCR第60-63 页
    · Western blot检查miR-221/222目的蛋白的表达第63-69 页
    · 流式细胞术分析细胞周期第69-71 页
    · 倒置相差显微镜观察形态第71-72 页
    · Caspase-3/7萤光素酶法检测细胞凋亡第72-74 页
  · 讨论第74-80 页
  · 小结第80-81 页
三、生物信息学分析突变型与经典型Ad-shmiR-221/222共表达腺病毒载体多层次半定量调控机制第81-88 页
  · 引言第81-82 页
  · 对象和方法第82 页
  · 结果第82-86 页
    · 确定shRNA引导链与靶miRNA形成的复合体的最佳三维结构第82-85 页
    · 检测shRNA引导链与靶miRNA形成的复合体的热力学稳定性第85-86 页
  · 讨论第86-87 页
  · 小结第87-88 页
结论第88-89 页
参考文献第89-93 页
发表论文和参加科研情况说明第93-94 页
综述第94-103 页
  miRNA与胶质瘤发病机制第94-99 页
  综述参考文献第99-103 页
致谢第103 页

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